Citation: Jinjun He, Jun Wang, Min Chen, Huan Yang, Zhiming Chen, Jinsheng Zhang. Colorimetric Detection of Cyanide Ion in Pure Water and Tap Water[J]. Chemistry, 2021, 84(6): 585-590.
纯水与自来水中氰离子的比色检测
English
Colorimetric Detection of Cyanide Ion in Pure Water and Tap Water
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Key words:
- Cyanide ion
- / Colorimetric detection
- / Azo-phenolic hydroxyl group
- / Deprotonation
- / Test strip
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氰离子(CN-)作为一种剧毒性的阴离子,不可避免的应用于制药、塑料制造、电镀、金、银的萃取等工业领域[1, 2]。当然,CN-也可产生于食物消化以及吸烟等过程[3]。然而,存在于特定细胞中的CN-却能体现出重要的生理功能[4, 5]。一旦进入生物细胞,CN-将与细胞色素c氧化酶中的Fe3+快速结合,由此抑制正常的电子传输,进而引起细胞缺氧致死[6]。体内存在的CN-能够影响血管、视觉、内分泌和代谢系统的正常机体功能[7],对人体的致死量约为0.5~3.5 mg/kg[8]。世界卫生组织(WHO)明确规定饮用水中CN-的限量为1.9μmol/L[9]。我国生活饮用水卫生标准规定的CN-限量为0.05mg/L[10]。正因如此,CN-的可视化检测受到众多环境学家、生物学家以及化学家的高度重视[11, 12]。
传统的CN-检测方法主要有常规滴定法[13]和电化学滴定法[14],前者需要使用生物不相容的显色试剂,而后者要借助电化学工作站,两种方法均不适用于CN-的原位检测。与传统检测方法相比,基于单分子的比色传感器具有高灵敏度、成本低廉、适合原位“裸眼”检测等特点[15, 16]。另外,单分子传感器能够同时解决传感过程中的三大挑战(选择性、灵敏度以及标准化)[17],因而受到众多科技工作者的关注。通常,此类传感器存在水溶性和生物兼容性差、易形成二次污染等缺点。例如,Li等[18]通过二噻吩乙烯类试剂在乙腈溶液中实现了CN-的比色检测;魏太保等[19]的研究显示,在DMSO溶液中,咪唑并吩嗪内酰胺荧光传感器对CN-表现出较好的选择性识别能力。但是,纯水相中CN-检测仍然是一项具有挑战性的工作。
为了拓展应用性,常采用亲水基团功能化的策略增强传感器分子的水溶性[20]。例如,Li等[21]设计合成了羧基功能化的苯并吡咯盐衍生物,并在纯水相中实现了微量CN-的比色、荧光检测。磺酸功能化的分子具有较好的水溶性以及生物相容性[22, 23],因而适用于传感器的设计合成。另外,偶氮基团是一类常见的显色基团,已被广泛应用于单分子传感器的设计中[24~26]。前期研究工作表明[27, 28],偶氮酚羟基可通过脱质子的作用机理实现对碱性阴离子的比色检测。基于我们对分子、离子可视化检测方面的工作兴趣[29, 30],在此设计合成了水溶性的对磺酸功能化的偶氮水杨醛吖嗪(S)。由于偶氮酚羟基较强的酸性,在纯水相中经由质子转移,表现出对CN-高选择性的比色检测,而且这种质子转移具有较好的可逆性,从而使得S可重复利用;并且,利用S可实现自来水样中CN-的检测。
1. 实验部分
1.1 仪器及试剂
1H NMR图谱使用Bruker 400MHz(TMS为内标,DMSO-d6为氘代试剂)核磁共振谱仪于室温下测定;高分辨质谱采用Waters Xevo G2-S QTOF测定。采用X-4数字显示显微熔点仪进行熔点测定;紫外-可见光谱数据采集于Shimadzu UV-2550型紫外可见分光光度计(1cm石英池)。在上海雷磁PHS-25型pH计检测下配制4-羟乙基哌嗪乙硫磺酸(HEPES)缓冲溶液(10mmol/L)。
四丁基氰化铵购于百灵威科技有限公司;对氨基苯磺酸、水杨醛、水合肼(85%)、HEPES均购于阿拉丁试剂公司;合成中所用到的有机溶剂均购于天津大茂化学试剂有限公司。钠盐或钾盐均购于上海麦克林生化科技有限公司。自来水取自于贵州师范大学花溪校区,其他实验用水均为蒸馏水。无特殊说明,其他化学试剂均为市售分析纯级,未经进一步纯化而直接使用。
CN-储备液(10mmol/L)为四丁基铵盐的水溶液,其他阴离子储备液(10mmol/L)为适量钠盐或钾盐的水溶液。S(0.5mmol/L)的储备液分别由蒸馏水或自来水配制。
1.2 传感器分子的合成与表征
目标产物合成路线如图式 1所示。
图式 1
中间体对磺酸苯基偶氮水杨醛参考文献[22]合成。S参考前期工作[27]合成。具体合成过程为:将3.22g(10.5mmol)对磺酸苯基偶氮水杨醛溶于适量甲醇,室温下加入含5mmol水合肼(85%)的甲醇溶液,在催化量浓盐酸存在下搅拌反应3min后有黄色沉淀析出,3h后停止反应。过滤沉淀,粗产物用无水EtOH/DMF重结晶,得到2.83g黄色固体S,产率为93%,熔点> 250℃。1H NMR(400MHz,DMSO-d6) δ:9.17(s,2H,-SO3H),8.40~8.39 (d,J=2.50Hz,2H,CH),8.03~8.00 (dd,J=8.80、2.5 Hz,2H,ArH),7.85~7.77 (m,10H,ArH),7.18 (d,J=8.90Hz,2H,ArH);HRMS-ESI (m/z):C26H20N6O8S2 [M+Na]+,[M+2Na-H]+的计算值分别为631.0676、653.0495;实测值分别为631.0686、653.0496。
2. 结果与讨论
2.1 传感器S对CN-的选择性
首先考察了各种阴离子(F-、Cl-、Br-、I-、AcO-、H2PO4-、HSO3-、SO42-、NO3-、CN-、HCO3-、HPO42-、NO2-、SO32-、CO32-和S2O32-)对S(20μmol/L)水溶液的紫外-可见光谱(UV-Vis)的响应性。由图 1(a)可知,不存在阴离子时,由于n-π*电子跃迁,S在纯水溶液(pH=6.80)中的最大吸收峰出现在350nm,溶液颜色为淡黄色。当加入20倍的阴离子(400μmol/L)后,只有CN-使其最大吸收波长红移至440nm,并呈现出宽带吸收。其他阴离子不能引起S溶液光谱响应,说明S对CN-表现出专一选择性。
图 1
2.2 传感器S对CN-的检测灵敏度
为了测定S对CN-的检测灵敏度,在纯水溶液中进行了UV-Vis光谱滴定实验,图 1(b)。随着CN-浓度的增加(0~212.5μmol/L),350nm处的吸收强度逐渐降低,而440nm处的新吸收峰强度逐渐增强,滴定至平衡时溶液颜色为橙色(插图),同时在266和376 nm处存在清晰的等吸收点,说明在此过程中有新物种出现。上述现象可能是S的偶氮酚羟基脱质子后形成对应的酚氧负离子所致[23~31]。光谱数据表明,S可实现水溶液中CN-的比率检测,吸收强度比率(A440nm/A350nm)与CN-浓度线性相关(图 1(c)),线性方程为:y=-0.11499+33224x。利用3SD/S法[28]得出检出限(LOD)为0.16μmol/L。值得说明的是,LOD低于WHO以及国内饮用水所规定的CN-最高限值。
2.3 CN-检测的干扰性测试
优良的检测试剂应该具有良好的抗干扰性。因而,考察S检测CN-的抗干扰能力尤为重要。由图 2可知,无论其他阴离子存在与否,A440nm/A350nm的比率强度基本相同,也就是说,S对CN-的比色检测基本不受其他阴离子的干扰。另外,考虑到S偶氮酚羟基的酸性以及CN-的碱性(pKa=9.3)[11],考察了HEPES缓冲溶液pH对S吸收光谱的影响(图 3),结果表明,在pH 2~7.5范围内,S在440nm处吸光度几乎没有变化,而pH高于7.5时,吸光度逐渐增大。当加入CN-后,吸光度在pH 5.5~8之间明显增强,说明S在6~9的pH范围内具有潜在应用。
图 2
图 3
2.4 S对CN-检测机制研究
由Benesi-Hildebrand(B-H)曲线[32](图 4)可知,1/(A-A0)(A、A0分别代表加入和未加入CN-时S溶液在440nm处的吸光度)与CN-浓度平方的倒数(1/[CN-]2)成线性关系,通过截距/斜率计算得出S与CN-的结合常数为2.24×106 (mol/L)-2。为了明确S与CN-作用的化学计量比,保持总浓度([S]+[CN-]=20μmol/L)恒定下配制系列摩尔分数(0.1,0.2,0.3,0.4,0.5,0.6,0.7,0.8,0.9)的溶液并检测其吸收光谱,绘制Job’s曲线(图 5)。440nm处吸光度最大值对应S摩尔分数为0.33,说明S与CN-化学计量比为1:2。利用1H NMR滴定实验(图 6)研究了S(3mmol/L)对CN-的检测机制。由于磺酸基团的吸电子作用以及分子内氢键作用,偶氮酚羟基的化学位移出现在较低场(δ 11.78)(图 6(a)),当加入2倍量CN-后,由于偶氮酚羟基的脱质子化使其共振吸收完全消失,酚氧负离子S2-的形成使分子电荷密度增大,同时导致芳香氢的化学位移均向高场移动(Δδ1, 1′=0.97,Δδ2, 2′=0.45,Δδ3, 3′=0.17,Δδ-SO3H=0.27,Δδother Ar-H=0.21),其中偶氮酚羟基邻位芳香氢(H1, 1′)化学位移的变化最为明显(图 6(b))。而在5倍量CN-存在下,磺酸基团(δ 8.40)氢质子的共振吸收并没有消失(图 6(c)),说明在此过程中磺酸基团不参与质子转移。有趣的是,光谱实验证明这种质子转移(HCl提供H+)过程具有很好的可逆性(图 7),赋予S可重复利用的优势。
图 4
图 5
图 6
图 7
S对CN-检测机制进一步通过密度泛函理论(DFT)方法计算确证。运用Gaussian 03量子化学程序包,在B3LYP/6-311G(d, p)水平和PCM溶剂化模型下进行计算[33]。S结构优化结果(图 8)显示,偶氮酚羟基与吖嗪结构单元中的N原子通过六元环形成[Nδ-…Hδ+…Oδ-]分子内氢键,偶氮酚羟基的O-H…N键中,O-H和H…N的键长分别为0.9926和1.7486 Å,基于NAO的键级分别为0.6408和0.0880。S及其对应酚氧阴离子(S2-)结构优化及其理论计算结果表明,S对应最高占据轨道(HOMO)和最低空轨道(LUMO)能量分别为6.31和3.00 eV,能量带隙为3.31eV。当脱质子形成酚氧负离子S2-时,HOMO和LUMO能级分别为4.93和2.48 eV,对应带隙为2.45eV。该计算结果与光谱实验中UV-Vis吸收峰红移的结果一致。
图 8
光谱实验、1H NMR滴定实验以及DFT计算表明,传感器分子S经由偶氮酚羟基与CN-之间可逆的质子转移,进而增强了分子内电荷转移,由此实现了CN-的可视化检测。
2.5 应用研究
由于S在纯水相中对CN-表现出专一选择性的比色检测能力,据此制作了比色检测试纸(图 9(a))。将普通定性滤纸用S(20μmol/L)水溶液浸润30min后,烘干得到乳黄色检测试纸。将CN-水溶液(10mmol/L,15μL)滴到检测试纸表面,瞬间可观察到接触部分变为橙色,而其他常见干扰阴离子[34]存在时无明显的颜色变化。待CN-检测试纸自然晾干,继而滴加稀盐酸(10mmol/L,6μL)至橙色斑点,30s内橙色斑点消失,结果再次证实了可逆的质子转移机制。有趣的是,将上述实验中所用蒸馏水用自来水代替,同样可发现类似的显色效果,图 9(b)。由此可知,S在蒸馏水以及自来水中对CN-具有响应时间短(30s)、选择性及可视化程度高的优势,满足原位“裸眼”检测的需求。
图 9
另外,考察了S对自来水样中CN-的模拟检测。取贵州师范大学花溪校区自来水样,经0.22μm水性膜过滤后调节pH为6.80。进而利用该水样分别配制CN-(10mmol/L)和S(20μmol/L)溶液,并进行光谱滴定实验。如图 10所示,在CN-的浓度为28~149 μmol/L时,440nm处吸光度与CN-浓度呈良好的线性关系,说明在此浓度范围内,S可检测实际水样中的CN-[35],LOD为0.63μmol/L。
图 10
3. 结论
本文以水溶性的偶氮水杨醛吖嗪为比色传感器,在纯水溶液中实现了CN-的高选择性比色检测,最低检测限为0.16μmol/L。UV-Vis光谱实验、1H NMR滴定以及DFT计算结果表明,S对CN-的比色检测机制为偶氮酚羟基可逆的质子转移。S对CN-可逆的比色检测可通过检测试纸得以确证。重要的是,S可用于实际水样中CN-的检测,检出限(0.63μmol/L)低于我国生活饮用水卫生标准规定的CN-限值,因而具有潜在的实际应用价值。
‡共同第一作者
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图 1 S(20μmol/L)在纯水中(a)对不同阴离子(20equiv)的UV-Vis光谱响应;(b) CN-对S(20μmol/L)的UV-Vis滴定曲线(插图:滴定前后溶液颜色的变化);(c)吸光度比率(A440nm/A350nm)与CN-浓度的线性关系、LOD的计算
Figure 1 In pure water solution of S (20μmol/L), (a) UV-Vis absorbance responses to 20 equiv, anions; (b) UV-Vis absorption titration of S (Inset: the colour changes of S and S + CN-, respectively); (c) Linear plot of A440nm/A350nm for calculating detection limit of CN-
计量
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