一种新型比色荧光增强型CN-探针的合成与性能研究

郝云鹏 解正峰 包万睿 王馨 石伟

引用本文: 郝云鹏, 解正峰, 包万睿, 王馨, 石伟. 一种新型比色荧光增强型CN-探针的合成与性能研究[J]. 有机化学, 2018, 38(8): 2109-2115. doi: 10.6023/cjoc201804034 shu
Citation:  Hao Yunpeng, Xie Zhengfeng, Bao Wanrui, Wang Xin, Shi Wei. Synthesis and Properties of a Novel Colorimetric and Fluorescent Turn-On Sensor for Cyanide[J]. Chinese Journal of Organic Chemistry, 2018, 38(8): 2109-2115. doi: 10.6023/cjoc201804034 shu

一种新型比色荧光增强型CN-探针的合成与性能研究

    通讯作者: 解正峰, xiezhf@swpu.edu.cn; 石伟, shiwei80@swpu.edu.cn
  • 基金项目:

    国家自然科学基金(Nos.21262034,21364013)、西南石油大学精细化学品青年科技创新团队(No.2017CXTD05)资助项目

摘要: 设计并合成一种具有席夫碱结构的新型荧光增强型探针7-(二丁基氨基)-2'-[(2-羟基苯亚甲基)氨基]-3-甲基-1-苯基-1H-螺[色烯并[2,3-c]吡唑-4,1'-异吲哚啉]-3'-酮(SCPz-S),通过1H NMR、13C NMR及高分辨质谱(HRMS)对其结构进行了表征.利用紫外-可见光谱和荧光光谱考察探针SCPz-S的离子识别性能,研究发现探针SCPz-S在THF/H2O(VV=1930:50,5 mmol/L Tris-HCl,pH=7.4)中对CN-具有比色和荧光上的双重响应.加入CN-后,探针SCPz-S的体系会由无色变为淡黄色,在575 nm荧光增强1060倍.探针SCPz-S拥有良好的抗干扰能力和很广的pH适用范围(pH=3~12).探针对CN-的检出限达到1.121×10-8 mol/L,并对其识别机理进行了研究.

English

  • 氰化物在电镀、金矿开采、合成树脂等领域发挥着重要的作用, 而在生态系统和环境中氰化物属于剧毒危险品[1~7].氰化物中毒可导致呕吐、抽搐、丧失意识和死亡[8~10].因此, 在化学化工、生物和环境等领域高效、便捷、快速地检测CN-就显得极为重要.目前, 已报道的探针主要是通过氢键作用[11~13]、自组装[14]、去质子化[15, 16]、亲核加成[17~24]以及配位方式[25~27]来检测氰根, 识别位点有氨基、酚羟基、羰基、α, β-不饱和羰基、二氰基乙烯、席夫碱和含硼化合物等.本课题组[29]前期也报道了两种含2-苯基-1, 2, 3-三唑骨架的二氰基乙烯型氰离子探针, 分别能够在DMSO和THF/H2O溶剂体系中检测氰根, 其检测限分别为1.43×10-6[28]和3.91×10-8 mol·L-1.

    本课题组[30~34]也合成了一些席夫碱类的荧光探针, 并应用于汞、银、铝、铜离子的识别中.在此基础上, 本文以2-(4-(二丁基胺基)-2-羟基苯甲酰基)苯甲酸和1-苯基-3-甲基-5-吡唑啉酮发生缩合反应得到一种类似罗丹明结构的新化合物SCPz, 肼解后再与水杨醛缩合得到席夫碱SCPz-S, 合成路线见Scheme 1.并进一步考察了该化合物对阴离子的识别作用, 研究表明该探针对氰根具有很好的选择性识别能力, 同时对识别机理进行了探究.

    反应初始以2-(4-(二丁基胺基)-2-羟基苯甲酰基)苯甲酸和1-苯基-3-甲基-5-吡唑啉酮为原料, 通过knoevenagel反应和脱水合环制备7-(二丁基氨基)-3-甲基-1-苯基-1H, 3'H-螺[色烯并[2, 3-c]吡-4, 1'-异苯并呋喃]-3'-酮(SCPz), 接着用水合肼肼解为2'-氨基-7-(二丁基氨基)-3-甲基-1-苯基-1H-螺[色烯并[2, 3-c]吡-4, 1'-异吲哚啉]-3'-酮(SCPzH), 然后同水杨醛缩合得到目标分子SCPz-S, 所合成的SCPzSCPzHSCPz-S都由1H NMR、13C NMR以及高分辨质谱进行结构表征.合成路线如Scheme 1所示.

    图式 1

    图式 1.  探针SCPz-S的合成路线
    Scheme 1.  Synthetic routes of probe SCPz-S

    利用紫外-可见光谱和荧光光谱考察SCPz-S对阴离子CN-, AcO-, Br-, Cl-, ${\rm{CO}}_{\rm{3}}^{2-}$, F-, ${{\rm{H}}_{\rm{2}}}{\rm{PO}}_{\rm{4}}^{{\rm{2-}}}$, ${\rm{HCO}}_{\rm{3}}^-$, ${\rm{HPO}}_{\rm{4}}^ {2-} $, ${\rm{HSO}}_3^ - $, I-, ${\rm{NO}}_{\rm{2}}^ - $, ${\rm{NO}}_{\rm{3}}^ - $, ${{\rm{P}}_2}{\rm{O}}_7^{4 - }$, ${\rm{PO}}_{\rm{4}}^{3 - }$, SCN-, ${\rm{SO}}_{\rm{4}}^{2 - }$, S2-的响应性能. 图 1是探针SCPz-S在THF/H2O (V:V=1930:50, 5 mmol/L Tris-HCl, pH=7.4)溶液中的紫外-可见吸收光谱图.如图所示, 加入离子前在340 nm处有明显的紫外吸收峰, 但是向探针SCPz-S (1.0×10-5 mol/L)的THF/H2O (V:V=1930:50, 5 mmol/L Tris-HCl, pH=7.4)溶液中加入CN- (1.0×10-4 mol/L)后, 出现了明显的红移现象, 340 nm处吸光度的强度显著变弱, 而440 nm处出现了新的吸收峰.加入相同当量的其它阴离子, 基本没有明显的光谱变化.在可见光下加入不同的阴离子, 通过肉眼观察, 发现只有CN- (1.0×10-4 mol/L)会使溶液的颜色从无色变为淡黄色(图 2).

    图 1

    图 1.  各种阴离子(1.0×10-4 mol/L)加入到SCPz-S (1.0×10-5 mol/L)的THF/H2O (V:V=1930:50, 5 mmol/L Tris-HCl, pH=7.4)溶液中的紫外光谱图
    Figure 1.  UV-vis spectra of SCPz-S (1.0×10-5 mol/L) in THF/H2O (V:V=1930:50, 5 mmol/L Tris-HCl, pH=7.4) upon addition of various anions (1.0×10-4 mol/L)

    图 2

    图 2.  可见光下加入各种阴离子(1.0×10-4 mol/L)探针SCPz-S的溶液颜色改变
    Figure 2.  Color change of the solution of probe SCPz-S induced by various anions (1.0×10-4 mol/L) under visible light

    图 3是在探针SCPz-S的THF/H2O (V:V=1930:50, 5 mmol/L Tris-HCl, pH=7.4)溶液加入各种阴离子后的荧光光谱变化.从荧光发射光谱中可以看到探针SCPz-S本身没有荧光, 加入CN- (1.0×10-4 mol/L)使SCPz-S在575 nm处的荧光出现了非常大的增强(1060倍), 而其它阴离子的加入则没有产生任何现象.在紫外灯(365 nm)下可以对这种变化进行肉眼观测.如图 4所示, 清晰的看到只有CN-存在的溶液才会产生较强的荧光, 而其它阴离子存在时则无明显的变化.上述现象说明SCPz-S可以作为对CN-有专一识别性能的比色荧光型探针.

    图 3

    图 3.  SCPz-S (1.0×10-5 mol/L)在THF/H2O (V:V=1930:50, 5 mmol/L Tris-HCl, pH=7.4)溶液中对各种阴离子(1.0×10-4 mol/L)的荧光光谱图(激发波长440 nm)
    Figure 3.  Fluorescence spectra of SCPz-S (1.0×10-5 mol/L) and upon the addition of anions (1.0×10-4 mol/L) in THF/H2O (V:V=1930:50, 5 mmol/L Tris-HCl, pH=7.4) (λex=440 nm)

    图 4

    图 4.  紫外灯下的SCPz-S (1.0×10-5 mol/L)溶液加入各种阴离子(1.0×10-4 mol/L)时的荧光照片
    Figure 4.  Photograph of the fluorescence of SCPz-S (1.0×10-5 mol/L) in the presence of various anions (1.0×10-4 mol/L) under UV lamp

    为了进一步考察探针在复杂情况下的响应性能, 检测是否会被其它阴离子、阳离子所干扰, 我们做了离子共存实验.首先向SCPz-S (1.0×10-5 mol/L)的THF/H2O (V:V=1930:50, 5 mmol/L Tris-HCl, pH=7.4)溶液中加入10 equiv.其它各种阴离子、阳离子, 然后再加入10 equiv.的CN-.从图 56可以看到, 随着CN-的加入, 溶液荧光发生了显著地增强, 而且荧光增强幅度并没有因为其它阴、阳离子的存在而产生较大变化, 说明这些常见的干扰阴离子、阳离子对SCPz-S识别CN-基本不会造成太大影响.因此, SCPz-S作为CN-探针有很好的抗干扰能力.

    图 5

    图 5.  THF/H2O (V:V=1930:50, 5 mmol/L Tris-HCl, pH=7.4)溶液里CN- (1.0×10-4 mol/L)和其他阴离子共存时的干扰实验图(激发波长440 nm)
    Figure 5.  Interference experiments with CN- (1.0×10-4 mol/L) and other anions coexisting in THF/H2O (V:V=1930:50, 5 mmol/L Tris-HCl, pH=7.4) (λex=440 nm)

    图 6

    图 6.  THF/H2O (V:V=1930:50, 5 mmol/L Tris-HCl, pH=7.4)溶液里CN- (1.0×10-4 mol/L)和阳离子共存时的干扰实验图(激发波长440 nm)
    Figure 6.  Interference experiments with CN- (1.0×10-4 mol/ L) and ions coexisting in THF/H2O (V:V=1930:50, 5 mmol/L Tris-HCl, pH=7.4) (λex=440 nm)

    为了研究探针SCPz-S对CN-的灵敏度, 在THF/ H2O (V:V=1930:50, 5 mmol/L Tris-HCl, pH=7.4)溶液中做了荧光滴定实验. 图 7a为探针SCPz-S在THF/ H2O (V:V=1930:50, pH=7.4)的混合溶剂中CN-浓度与荧光强度之间的渐变图.可以看到在CN-加入前, 575 nm处几乎没有荧光, 但是随着CN-浓度在不断的增加, 荧光强度也在不断增长.从图 7b得到, 溶液体系的离子浓度在0~1.0×10-4 mol/L范围内时, 575 nm处荧光逐渐增强, 识别比率逐渐增大, 探针SCPz-S荧光增强幅度会伴着CN-浓度的增大而增强的更加明显, 而且CN-在小浓度的范围内(5.0×10~7~3.0×10~6 mol/L), 探针SCPz-S荧光强度与CN-浓度呈线性相关, 线性相关系数为0.9913.根据3σ法则[35]得到探针SCPz-S对CN-的检出下限为1.121×10-8 mol/L.

    图 7

    图 7.  (a) 在SCPz-S (1.0×10−5 mol/L)的THF/H2O (V:V=1930:50, 5 mmol/L Tris-HCl, pH=7.4)溶液中逐渐加入不同浓度CN- (0~1.0×10-4 mol/L)的荧光响应强度图和(b) CN-浓度与575 nm处的荧光强度的点关系图
    Figure 7.  (a) Fluorescence spectra of SCPz-S (1.0×10−5 mol/L) in THF/H2O (V:V=1930:50, 5 mmol/L Tris-HCl, pH=7.4) upon the addition of CN- (0~1.0×10-4 mol/L) with an excitation of 440 nm and (b) fluorescence intensity at 575 nm versus the number of equivalents of CN- added

    Insert: enlarged figure in the concentration range of 5×10-7~3×10-6 mol/L of CN-

    荧光探针在检测离子时往往会受到pH的影响, 为了测试探针SCPz-S的pH适用范围, 通过实验测定了不同pH值下溶液的荧光强度.在图 8中可以看到, 在pH为3~12之间SCPz-S几乎没有荧光, 而SCPz-S+CN-在3~7的酸性pH范围内表现出荧光强度不断增强, 同时pH大于7的后保持了相对良好的稳定性, 这表明该探针SCPz-S可在pH为3~12的范围内检测CN-.相对碱性环境而言, 酸性环境下的灵敏度较低, 本文选择相对接近人体环境的pH=7.4作为整个实验的测试条件.

    图 8

    图 8.  在pH的影响下SCPz-SSCPz-S+CN-的荧光响应强度
    Figure 8.  Effect of pH on fluorescence intensity of the SCPz-S and SCPz-S+CN-

    为了推测荧光探针SCPz-S和CN-之间可能的结合机理, 首先进行了Job's plot的测定, 以确定探针SCPz-S和CN-相互作用时的化学计量比.通过保持溶液内的SCPz-S和CN-的总浓度为1.0×10-4 mol/L恒定, 逐步改变探针与离子的配比进行荧光测定, 寻找能够产生最大荧光强度的比值.实验结果表明(图 9), 在0.5处出现了最大荧光强度, 因此推测探针SCPz-S与CN-的化学计量比为1:1.

    图 9

    图 9.  SCPz-S与CN-的Job's plot
    Figure 9.  Job's plot of SCPz-S with CN-

    由于在探针SCPz-S中有两个识别位点CH=N和OH, 为了进一步确定SCPz-S检测CN-的机理属于亲核加成还是去质子化, 用DMSO-d6作氘代溶剂, 通过氢谱核磁滴定实验进行推测, 当在探针SCPz-S中加入四丁基氰化铵后, 在核磁氢谱的δ 10.37处的羟基氢消失, 而δ 9.36处的CH=N上的氢并没有消失, 而在探针SCPz-S中加入氘水后, 也是酚羟基上的氢消失, 并且在探针SCPz-S中同时加入氘水和四丁基氰化铵后, 也只有酚羟基上的氢消失, CH=N上的氢始终没有消失(图 10), 说明了此检测机理可能是CN-的去质子化作用.从图中还可以发现, 随着氰化物的增加, 在δ 9.36的(CH=N)峰逐渐减弱并显示出向高场的位移的趋势, 这表明羟基的去质子化让探针SCPz-S酚羟基的氧上负电子参与苯环的共轭, 使得苯环区电子云密度增加, 屏蔽效应也随之增加, 导致苯环区的氢向高场位移.而通过碳谱的核磁滴定实验发现, 滴定前探针SCPz-S分子中螺环季碳的化学位移在δ 64.77处, 而加入四丁基氰化铵后的碳谱中在δ 64.77处的螺环季碳原子并没有消失(图 11), 说明该探针在检测CN-时没有开环.在高分辨质谱中同样也没发现符合亲核加成机理的[SCPz-S+CN-]的离子峰, 只发现加四丁基氰化铵前出现SCPz-S的离子峰m/z 626.3126 [SCPZ-S+H+]和加入CN-后出现了m/z 648.2842 [SCPz-S-H++Na++H+]的离子峰, 这也表明SCPz-S检测CN-是去质子化过程.而罗丹明类酰腙化合物检测CN-也有相同机理的文献报道[15], 因此, 推测可能的识别机理如Eq. 1所示.

    图 10

    图 10.  在DMSO-d6中探针SCPz-S和CN-的核磁氢谱滴定谱图
    Figure 10.  1H NMR titration spectra of SCPz-S and CN- in DMSO-d6

    图 11

    图 11.  在DMSO-d6中探针SCPz-S和CN-的碳谱核磁滴定
    Figure 11.  13C NMR titration spectra of SCPz-S and CN- in DMSO-d6

    本文成功合成了一种新型比色荧光探针SCPz-S,并对其结构进行表征.通过研究发现探针SCPz-S可以在THF/H2O (V:V=1930:50, 5 mmol/L Tris-HCl, pH=7.4)的混合溶剂中对CN-实现高选择性的"turn-on"可视化荧光识别.当加入CN-时, 575 nm处的荧光发射强度增强1060倍, 同时裸眼观察到溶液从无色变为淡黄色.探针SCPz-S对于CN-的响应不会受到其他阴离子的影响, 并且检测限可达1.121×10-8 mol/L.探针SCPz-S可以在较广的pH范围内工作, 这对研究生物体和环境中CN-的识别检测有一定的指导意义.

    X-4数字显微熔点测定仪(北京泰克仪器有限责任公司, 未校正); Q-TOF高分辨飞行时间质谱仪(美国waters公司); BRUKER 400 MHz核磁共振仪(TMS内标, 1H NMR和13C NMR); UV-6000 pc紫外可见分光光度计(上海元析仪器有限公司); F-320荧光光度计(天津港东科技公司).

    本实验所使用的试剂和药品均为市售分析纯. 2-[4-(二丁基胺基)-2-羟基苯甲酰基]苯甲酸、1-苯基-3-甲基-5-吡唑啉酮, 阿达玛斯试剂; 乙酸乙酯、石油醚、水合联氨、水杨醛、浓硫酸(98%)、无水乙醇、四氢呋喃(THF), 成都科隆试剂有限公司; 二甲亚砜(DMSO), 天津市化学试剂有限公司.除THF需要经过重蒸纯化, 其它试剂均不做进一步处理.在光谱实验中, 除CN-用四丁基铵盐来配制, 其它所有阴离子均由其钾盐或钠盐配置而得, 所有阳离子均由其盐酸盐或硝酸盐配置而得.实验用水为超纯水.

    将2-[4-(二丁氨基)-2-羟基苯甲酰基]苯甲酸(0.37 g, 1.0 mmol)和1-苯基-3-甲基-5-吡唑啉酮(0.80 g, 1.0 mmol)加入到25 mL圆底烧瓶中, 再滴加5 mL浓硫酸(98%).在100 ℃下反应搅拌10 h.室温冷却, 在冰浴条件下, 向圆底烧瓶中边加入冷水边用玻璃棒搅拌, 有深红色固体析出.减压抽滤, 滤饼用冷水洗涤三次, 得到砖红色粗产物.经过硅胶柱色谱分离, 旋蒸后干燥得到淡粉色絮状固体, 产率73%. m.p. 203~205 ℃; 1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ: 8.02 (d, J=7.5 Hz, 1H), 7.86 (dd, J=7.7, 1.0 Hz, 2H), 7.68 (t, J=7.4 Hz, 1H), 7.61 (t, J=7.9 Hz, 1H), 7.56~7.50 (m, 2H), 7.35 (t, J=7.4 Hz, 1H), 7.24 (d, J=7.6 Hz, 1H), 6.64 (d, J=8.9 Hz, 1H), 6.48~6.36 (m, 2H), 3.32~3.22 (m, 4H), 1.66 (s, 3H), 1.56 (dt, J=15.2, 7.6 Hz, 4H), 1.35 (dq, J=14.7, 7.3 Hz, 4H), 0.95 (t, J=7.3 Hz, 6H); 13C NMR (101 MHz, CDCl3) δ: 12.89, 13.96, 20.28, 29.27, 50.77, 83.35, 95.79, 98.18, 105.80, 109.63, 121.37, 123.79, 124.89, 126.60, 127.23, 129.05, 129.26, 129.60, 134.77, 137.96, 146.33, 148.36, 149.90, 152.03, 152.58, 169.52. HRMS (TOF-MS+) calcd for C32H34N3O3 [M+H]+ 508.2595, found 508.2596.

    SCPz (0.507g, 1.0 mmol)加入到50 mL圆底烧瓶中, 放入5 mL无水乙醇作溶剂, 最后滴加0.5 mL水合联氨.将反应回流搅拌4 h.停止反应后待溶液冷却至室温, 有白色固体析出, 减压抽滤并用无水乙醇多次洗涤.所得到的滤饼用再无水乙醇重结晶, 干燥得白色粉状固体, 产率87%. m.p. 218~219 ℃; 1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ: 7.99~7.94 (m, 1H), 7.88 (ddd, J=4.3, 3.2, 1.7 Hz, 2H), 7.57~7.48 (m, 4H), 7.36~7.30 (m, 1H), 7.20~7.14 (m, 1H), 6.52~6.47 (m, 1H), 6.42 (d, J=2.6 Hz, 1H), 6.35 (dd, J=8.9, 2.6 Hz, 1H), 3.71 (s, 2H), 3.30~3.22 (m, 4H), 1.69 (s, 2H), 1.61 (s, 3H), 1.58 (s, 1H), 1.53 (d, J=7.8 Hz, 1H), 1.35 (dq, J=14.6, 7.3 Hz, 4H), 0.95 (t, J=7.3 Hz, 6H); 13C NMR (101 MHz, CDCl3) δ: 166.03, 153.46, 149.45, 149.29, 149.01, 146.04, 138.18, 132.68, 130.27, 129.22, 128.68, 128.17, 126.34, 123.78, 123.13, 121.02, 109.61, 104.75, 98.54, 94.18, 64.61, 50.72, 29.33, 20.29, 13.96, 12.61. HRMS (TOF-MS+) calcd for C32H36N5O2 [M+H]+ 522.2864, found 522.2864.

    SCPzH (0.509 g, 1.0 mmol)加入到50 mL圆底烧瓶中, 反应溶剂为5 mL无水乙醇, 再滴加水杨醛(0.134 g, 1.1 mmol)至反应中, 回流搅拌5 h.待反应冷却至室温后, 减压抽滤, 所得滤饼用无水乙醇洗涤数次, 再用无水乙醇重结晶, 干燥得到白色粉状固体, 产率83%. m.p. 245~247 ℃; 1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ: 10.56 (s, 1H), 9.62 (s, 1H), 8.02~7.99 (m, 1H), 7.89 (d, J=7.8 Hz, 2H), 7.59 (dt, J=7.7, 6.1 Hz, 2H), 7.55~7.51 (m, 2H), 7.34 (t, J=7.4 Hz, 1H), 7.25~7.16 (m, 3H), 6.82 (dd, J=9.3, 5.3 Hz, 2H), 6.56 (t, J=6.9 Hz, 1H), 6.47 (d, J=2.5 Hz, 1H), 6.34 (dd, J=9.0, 2.5 Hz, 1H), 3.27~3.21 (m, 4H), 1.62 (s, 3H), 1.55 (dt, J=15.2, 7.6 Hz, 4H), 1.38~1.28 (m, 4H), 0.94 (t, J=7.3 Hz, 6H); 13C NMR (101 MHz, CDCl3) δ: 164.10, 158.77, 155.13, 153.23, 149.62, 148.98, 148.22, 145.81, 138.07, 133.56, 131.60, 130.47, 129.22, 129.12, 128.29, 126.52, 124.11, 123.48, 121.56, 119.12, 118.45, 116.96, 109.71, 105.36, 98.46, 94.86, 65.54, 50.70, 29.31, 20.30, 13.95, 12.73. HRMS (TOF-MS+) calcd for C39H40N5O3 [M+H]+ 626.3126, found 626.3126.

    用分析天平精确称量样品SCPz-S, 于10 mL容量瓶用DMSO溶解(1.0×10-3 mol/L).用超纯水将被测阴离子CN-, AcO-, Br-, Cl-, ${\rm{CO}}_{\rm{3}}^{2 - }$, F-, ${{\rm{H}}_{\rm{2}}}{\rm{PO}}_{\rm{4}}^{{\rm{2 - }}}$, ${\rm{HCO}}_{\rm{3}}^ - $, ${\rm{HPO}}_{\rm{4}}^{{\rm{2 - }}}$, ${\rm{HSO}}_3^ - $, I-, ${\rm{NO}}_{\rm{2}}^ - $, ${\rm{NO}}_{\rm{3}}^ - $, ${{\rm{P}}_2}{\rm{O}}_7^{4 - }$, ${\rm{PO}}_{\rm{4}}^{3 - }$, SCN-, ${\rm{SO}}_{\rm{4}}^{2 - }$配制成1.0×10-1 mol/L的溶液, 以备留用.所配置溶液均在需要时进行稀释.在实验过程中, 每次先取20 μL探针溶液加入到比色皿中, 再加入溶剂THF/H2O (V:V=1930:50, 5 mmol/L Tris-HCl, pH=7.4)至总体积为2 mL, 最后加入2 μL各种阴离子, 充分搅拌一段时间, 待配合完全之后进行紫外及荧光光谱测定.

    辅助材料(Supporting Information)  化合物SCPz, SCPzH和探针SCPz-S1H NMR、13C NMR和高分辨质谱谱图及SCPz-S+CN-的高分辨质谱谱图, 氢谱核磁滴定谱图, SCPz-S+CN-的时间响应图, DMSO中SCPz-S对CN-的荧光响应.这些材料可以免费从本刊网站(http://sioc-journal.cn/)下载.

    1. [1]

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  • 图式 1  探针SCPz-S的合成路线

    Scheme 1  Synthetic routes of probe SCPz-S

    图 1  各种阴离子(1.0×10-4 mol/L)加入到SCPz-S (1.0×10-5 mol/L)的THF/H2O (V:V=1930:50, 5 mmol/L Tris-HCl, pH=7.4)溶液中的紫外光谱图

    Figure 1  UV-vis spectra of SCPz-S (1.0×10-5 mol/L) in THF/H2O (V:V=1930:50, 5 mmol/L Tris-HCl, pH=7.4) upon addition of various anions (1.0×10-4 mol/L)

    图 2  可见光下加入各种阴离子(1.0×10-4 mol/L)探针SCPz-S的溶液颜色改变

    Figure 2  Color change of the solution of probe SCPz-S induced by various anions (1.0×10-4 mol/L) under visible light

    图 3  SCPz-S (1.0×10-5 mol/L)在THF/H2O (V:V=1930:50, 5 mmol/L Tris-HCl, pH=7.4)溶液中对各种阴离子(1.0×10-4 mol/L)的荧光光谱图(激发波长440 nm)

    Figure 3  Fluorescence spectra of SCPz-S (1.0×10-5 mol/L) and upon the addition of anions (1.0×10-4 mol/L) in THF/H2O (V:V=1930:50, 5 mmol/L Tris-HCl, pH=7.4) (λex=440 nm)

    图 4  紫外灯下的SCPz-S (1.0×10-5 mol/L)溶液加入各种阴离子(1.0×10-4 mol/L)时的荧光照片

    Figure 4  Photograph of the fluorescence of SCPz-S (1.0×10-5 mol/L) in the presence of various anions (1.0×10-4 mol/L) under UV lamp

    图 5  THF/H2O (V:V=1930:50, 5 mmol/L Tris-HCl, pH=7.4)溶液里CN- (1.0×10-4 mol/L)和其他阴离子共存时的干扰实验图(激发波长440 nm)

    Figure 5  Interference experiments with CN- (1.0×10-4 mol/L) and other anions coexisting in THF/H2O (V:V=1930:50, 5 mmol/L Tris-HCl, pH=7.4) (λex=440 nm)

    图 6  THF/H2O (V:V=1930:50, 5 mmol/L Tris-HCl, pH=7.4)溶液里CN- (1.0×10-4 mol/L)和阳离子共存时的干扰实验图(激发波长440 nm)

    Figure 6  Interference experiments with CN- (1.0×10-4 mol/ L) and ions coexisting in THF/H2O (V:V=1930:50, 5 mmol/L Tris-HCl, pH=7.4) (λex=440 nm)

    图 7  (a) 在SCPz-S (1.0×10−5 mol/L)的THF/H2O (V:V=1930:50, 5 mmol/L Tris-HCl, pH=7.4)溶液中逐渐加入不同浓度CN- (0~1.0×10-4 mol/L)的荧光响应强度图和(b) CN-浓度与575 nm处的荧光强度的点关系图

    Figure 7  (a) Fluorescence spectra of SCPz-S (1.0×10−5 mol/L) in THF/H2O (V:V=1930:50, 5 mmol/L Tris-HCl, pH=7.4) upon the addition of CN- (0~1.0×10-4 mol/L) with an excitation of 440 nm and (b) fluorescence intensity at 575 nm versus the number of equivalents of CN- added

    Insert: enlarged figure in the concentration range of 5×10-7~3×10-6 mol/L of CN-

    图 8  在pH的影响下SCPz-SSCPz-S+CN-的荧光响应强度

    Figure 8  Effect of pH on fluorescence intensity of the SCPz-S and SCPz-S+CN-

    图 9  SCPz-S与CN-的Job's plot

    Figure 9  Job's plot of SCPz-S with CN-

    图 10  在DMSO-d6中探针SCPz-S和CN-的核磁氢谱滴定谱图

    Figure 10  1H NMR titration spectra of SCPz-S and CN- in DMSO-d6

    图 11  在DMSO-d6中探针SCPz-S和CN-的碳谱核磁滴定

    Figure 11  13C NMR titration spectra of SCPz-S and CN- in DMSO-d6

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  • 发布日期:  2018-08-01
  • 收稿日期:  2018-04-17
  • 修回日期:  2018-05-15
  • 网络出版日期:  2018-08-24
通讯作者: 陈斌, bchen63@163.com
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    沈阳化工大学材料科学与工程学院 沈阳 110142

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