图1 抗菌型一氧化碳释放分子先导结构CORMs
1. CORMs of transition-metal possessing antibacterial activities
设计具有缓释CO功能的羰基金属化合物是实现CO杀菌的有效途径之一(图 1).商品化CORM-3稳定性较差, 易被传输溶剂分解, 在水相快速水解释放CO.Saraiva等研究发现, 250 μmol/L的CORM-2可杀灭大肠杆菌和金黄色葡萄球菌; Mann和Motterlini等[11]发展了一类氨基酸螯合羰基氯化钌的水溶性释放分子CORM-3.对于常见的革兰氏阴性大肠杆菌, 400 μmol/L的CORM-3有效降低其存活率, 而金黄色葡萄球菌对CORM-3表现出轻微的耐药性; ALF021含有五个配位羰基, 其M-CO键容易断裂快速解离出CO, 由于在水相中释放CO过快, 因此其CO的生物利用率不高, 浓度为600 μmol/L时对金黄色葡萄球菌表现出明显抑菌作用[12].肌红蛋白免疫实验表明, ALF062和CORM-371可在体外生理环境下缓释CO.抑菌实验表明, 50 μmol/L的ALF062可明显抑制大肠杆菌, 10 μmol/L的CORM-371可明显抑制铜绿假单胞菌的生长[13].调控CORM的缓释动力学是提高CO生物利用率、增强一氧化碳释放分子杀菌活性的关键.我们前期工作研究表明, 非羰基键的离去是羰基金属缓释CO的决速步骤[14].
为了有效调控离子型[M (CO)5L]-的一氧化碳释放速率, 本文发展了一类离子型Fischer卡宾羰基金属化合物(Fc-CORM), 其中五羰基卡宾铬阴离子单元可水解缓释一氧化碳, 而季铵盐阳离子可有效调节CORM水溶性.肌红蛋白免疫试验发现, 选择合适金属可有效控制CO缓释速率: Mo系列(2a~2e) > Cr系列(1a~1e) > W系列(3a~3e).抗菌实验发现, 此类CORM对于大肠杆菌具有明显抑制作用.中速Cr类Fc-CORM表现出最佳的抑菌活性, 30 μmol/L即可100%杀死大肠杆菌, 而缓释W类Fc-CORM对耐药大肠杆菌表现出明显抑菌活性.对照试验显示, 失活释放分子(i-CORM)几乎没有抑菌功能, 该结果直接证明Fc-CORM的杀菌活性来自其释放的CO.
一氧化碳(Carbon monoxide, CO)是一类重要气体信使分子, 它可强烈结合呼吸氧化酶和球蛋白, 抑制微生物呼吸作用[1, 2].近期研究发现, CO是金色葡萄球菌呼吸链的有效抑制剂[3]; 同时, CO可增强宿主防御对于大肠杆菌的吞噬作用.CO还能够促进细胞内氢氧根自由基产生, 大量活性氧物种的富集会造成细胞DNA的损伤, 有效阻止其繁殖生长[4].食品工业中, 含CO的包装气可有效抑制有害菌的生长, 防止冷鲜肉类腐败, 延长存储期[5].在微生物体系内, CO可自由穿越各类生物膜, 与多种含过渡金属靶点结合[6], 可同时作用于病变组织和良性组织.气体CO难以靶向生物靶点定量传输, 无法临床应用, 其医学治疗研究受到极大限制[7, 8].使用过渡金属羰基化合物作为一氧化碳释放分子(CO releasing molecule, CORM), 有望在生物靶点区域富集CO, 从而实现其生物功能[9].近年来, 研究CORM的抑菌活性与杀菌机制是CO微生物学的研究热点[10].
一氧化碳是难溶于水的气体小分子, 与金属配位形成的羰基化合物大多难以在水相体系溶解.提高过渡金属羰基化合物CORM的水溶性是其生物治疗的关键, 采用离子型金属羰基配位结构, 可有效增强相应释放分子的水溶性[16].为了考察相对分子质量、中心金属、季铵盐结构等分子特征对Fc-CORM水溶性的影响, 我们采用视差法[17]测定了此类卡宾化合物的水溶性.文献报道, CORM在较低低浓度下( < 5 mg/mL)即表现出明显CO的生理和药理作用.因此, 我们测试25 ℃下1 mg Fc-CORM在1 mL纯水溶液的溶解性.通过观察Fc-CORM水溶液的澄清透明、浑浊、沉淀溶解状态判断其溶解性[18].由表 1可知, 第六族金属羰基类Fc-CORM具有较好的亲水性.季铵盐阳离子的烷基链可直接影响了整个分子的亲水性.C4的四甲基铵为阳离子形成的化合物1a, 2a, 3a可溶于水.实验还发现, 随着碳链的增加, Fc-CORM的水溶性下降, 其中含C8的四乙基CORM的水溶性大于含C10的三甲基苄基CORM, 而含C16的四丁基CORM的溶解性最差.中心金属也会影响Fc-CORM的水溶性.对比三甲基苄基的Fc-CORM的水溶性发现, 其溶解性为Cr系列大于Mo和W系列, 这可能与分子量变化有关.
[M (CO)5L]-先导结构的CORM药物层含有5个配位羰基, 药物层的非羰基配体L可有效调节整个分子的水溶性和CO释放, 是一类具有治疗前景的CORM先导化合物结构.第六族过渡金属[M (CO)5] (M=Cr, Mo, W)可与Fischer卡宾[:C (=XR') R] (X=O, N)形成18电子稳定过渡金属羰基化合物.前期研究工作发现, 选择N, O作为β-杂原子可调节孤对电子对于缺电子卡宾碳中心的离域, 可改善[M (CO)5]单元的水相CO释放性能.然而, 中性CORM水溶性差, 极大限制了此类CORM的CO治疗研究[15].在五羰基金属Fischer卡宾类化合物的合成实验中, 我们发现五羰基乙酰基合M与阴离子卡宾存在互变异构, 季铵盐可稳定该卡宾阴离子结构.基于此, 本文以六羰基铬、六羰基钼、六羰基钨为原料, 在低温下以甲基锂亲核取代配位的羰基, 进而经历复分解反应制备了三类共十五个水溶性Fischer卡宾季铵盐1a~3e(Scheme 1).化合物为稳定黄色固体, 波谱分析与元素分析表明其结构与预测符合.红外光谱中, 1a~1e的特征羰基吸收出现在2027~2032和1875~1900 cm-1区域, 2a~2e的特征羰基吸收在2043~2050和1893~1912cm-1区域, 3a~3e的羰基特征吸收则出现在2043~2047和1895~1904 cm-1附近.这些M-CO的特征吸收均高于其中性同类物, 说明卡宾阴离子向中心金属提供更多电子, 进而增加金属d电子向CO的π*轨道的反馈程度, 有效提高了金属与CO之间的配位作用.核磁显示, 此类化合物甲基的特征峰出现在δ 2.40左右, 季铵盐也显示出相应特征峰.在溶液状态, Fc-CORM较为稳定, 因此, 我们采用高分辨ESI-MS测定其分子离子峰及相关脱羰形成的碎片.以化合物1c为例, 其羰基金属卡宾阴离子峰为m/z 234.9331, 其脱去羰基的碎片分别为: m/z 206.9378 (M--CO)、178.9434 (M--2CO)、150.9481 (M--3CO)、122.9538 (M--4CO), 与计算值相符.
| M | (CH3)4 | (C2H5)4 | (C4H9)4 | (CH3)3, C7H7 | (C2H5)3, C7H7 |
| Cr | 溶解 | 溶解 | 微溶 | 溶解 | 溶解 |
| Mo | 溶解 | 溶解 | 微溶 | 微溶 | 微溶 |
| W | 溶解 | 溶解 | 微溶 | 微溶 | 微溶 |
肌红蛋白免疫法是测试过渡金属羰基化合物缓释一氧化碳的重要方法.使用紫外光谱仪通过跟踪500~600 nm区域脱氧肌红蛋白向碳氧肌红蛋白的转化, 可测量Fc-CORM缓释CO的速率.我们选取含50 μmol/L的肌红蛋白PBS (Phosphate-buffered saline)溶液, 分别加入60, 40和20 μmol/L的1a~3e, 考察此类Fc-CORM的CO释放效率和速度.在体外生理环境下(PBS, pH=7.4, 37.8 ℃), [N (C4H9)4]-[Cr (=C{OCH3}CH3)(CO)5] (1c)可有效水解缓放一氧化碳, 图 2为脱氧肌红蛋白(Mb)转化为碳氧肌红蛋白(MbCO)的紫外光谱叠加及相应动力学曲线.
为了全面评价Fc-CORM释放CO的能力, 分别采用浓度60, 40和20 μmol/L的1c进行CO释释放试验.图 2(b)列出了相应CO释放动力学曲线.可以看出, 60 μmol/L的1c仅用2500 s即可释放40 μmol/L的CO, 进而迅速饱和肌红蛋白溶液.当1c浓度为40 μmol/L时, CO释放速度率略有下降, 2500 s时MbCO的浓度为35 μmol/L, 说明第二分子CO释放较慢.试验结果表明, 1c需要4000 s才能饱和Mb溶液.理论上, 20 μmol/L的1c携带了100 μmol/L的CO, 若所有配位羰基解离则可转化所有45 μmol/L的Mb.然而, 20 μmol/L1c经历8000 s的CO释放过程, 共转化了33 μmol/L的MbCO.由此可判断, 一分子的Fc-CORM可快速水解释放两分子CO, 而剩余三个配位羰基在体外生理环境下较稳稳定.
图 2(a)呈现了1c(60 μmol/L)转化Mb (Myoglobin) (45 μmol/L)的全过程, 其中五个清晰的等吸光点(504, 510, 550, 570, 585 nm)表明整个释放过程未经历其他中间体.整个CO释放过程中, 肌红蛋白稳定存在, Fc-CORM的水解释放未导致肌红蛋白降解, 表明此类释放分子生物相容性较好.Fc-CORM的中心金属携带了五个配位羰基, 理论上一分子Fc-CORM可释放五个一氧化碳.
为了全面考察Fc-CORM的释放性能与其配位结构之间的关系, 我们总结了三类共十五个阴离子型Fc-CORM的CO释放半衰期(图 3).实验数据表明, Cr系列化合物1a~1e的释放速率适中, 其半衰期在t1/2, 60 μmol/L和t1/2, 40 μmol/L为500和1282 s, 而慢于其中性同类物, Cr (=C{OCH3}CH3)(CO)5(t1/2, 60 μmol/L和t1/2, 40 μmol/L分为215和231 s).有趣的是, Mo系列化合物2a~2e释放CO的速率很快, 其中2d的t1/2, 60 μmol/L和t1/2, 40 μmol/L分为266和394 s, 快于同类中性Fc-CORM, Mo (=C{OCH3}CH3)(CO)5 (t1/2, 60 μmol/L和t1/2, 40 μmol/L分为585和591 s)[14].W系列化合物3a~3e的水相降解释放缓慢, 其半衰期要远大于Cr系列(1a~1e)和Mo系列(2a~2e) Fc-CORM.我们还注意到, Fc-CORM的缓释速率也与其所含季铵盐的类型有关.对比2a~2e的CO释放半衰期, 不难发现, 水溶性更好的2a和2b释放速度相近, 略快于2c.而对于中速Fc-CORM (1a~1e)而言, 季铵盐的差别没有显著影响相关释放分子的释放速度.
传统有机抗生素分子的抗菌靶点相对单一, 很难杀灭各类新出现的耐药性细菌[19, 20].CORM是一类具有应用前景的多靶点抗菌有机金属分子, 它不仅提供一氧化碳药物源, 还联合过渡金属中心、有机金属片段和抗菌有机单元的生物毒性, 协同作用全面抑制耐药菌的生长繁殖[21~23].寻找可高效释放CO的先导结构, 研究CO抗菌活性与缓释机制, 是发展抗耐药菌CORM的科学基础.基于此, 研究了Fc-CORM对于常见革兰氏阴性菌和几类临床耐药菌的抑菌活性, 初步考察了CO释放速率与Fc-CORM抗菌活性之间的关系.
| 种类 | MIC (ug/mL) | ||
| Cr (1b) | Mo (2b) | W (3b) | |
| 金色葡萄球菌 | n.d.a | 128 | n.d. |
| 大肠杆菌 | n.d | 128 | 64 |
| 枯草杆菌 | n.d | 128 | 128 |
| 肺炎克雷伯菌 | n.d | 128 | 128 |
| a n.d.=not detected. | |||
Fc-CORM-Mo为快速释放分子, 实验表明其抑菌活性较高.40 μmol/L的2b即可杀灭90%的细菌, 杀菌曲线(图 5)显示其MIC为60 μmol/L.值得注意, 1b的杀菌效果明显, 5 μmol/L即表现出抑菌作用, 10 μmol/L可杀灭80%微生物.化合物1b的抗菌活性曲线见图 6, 其中Cr (1b)的最小抑菌浓度(MIC)为30 μmol/L, 对大肠杆菌的抑制活性远高于CORM-3 (MIC=400 μmol/L).
为了进一步研究Fc-CORM的抗菌机制, 我们考察了不含配位羰基的失活一氧化碳释放分子(i-CORM)的生物活性.选取同种季铵盐不同中心金属的三种Fc-CORM (1b、2b和3b), 分别用DMSO配成50 μmol/L的样品溶液, 一份直接测其抗菌活性, 结果作为对照组.另一份在室温下(25 ℃)放置一周, 红外检测CORM的DMSO溶液, 待CORM的配位羰基充分解离.取此样品作为i-CORM, 以大肠杆菌为实验菌种, 测其抗菌活性.图 8对比了CORM和i-CORM的抑菌活性.可以看出, 不含羰基的i-CORM (1a', 1b'和1c')几乎没有抗菌活性.此实验结果证明, 季铵盐正离子, 过渡金属铬、钼和钨均不具备杀菌功能.也就是说, Fc-CORM所释放的CO是关键杀菌药物源.
抗菌实验选取普通革兰氏阴性菌大肠杆菌评价了Fc-CORM中3b的生物活性.图 4(a)为3b存在下, 13 h后微生物生长的情况.可以看出, 当3b浓度低于50 μmol/L时, Fc-CORM对细菌生长几乎没有影响; 当3b浓度增加到100 μmol/L时, 培养皿内未明显观察到细菌群里.为了计算Fc-CORM的最小抑菌浓度(MIC), 将菌落形成单位(CFU)减少比率与3b的浓度进行作图(图 4b), 可看出随3b浓度的增加菌落数目明显减少, 其MIC为80 μmol/L.
最后, 我们采用试管二倍稀释法, 考察了1b, 2b和3b对于含β-内酰胺酶的耐药性细菌(金色葡萄球菌、大肠杆菌、枯草杆菌和肺炎克雷伯菌)的生物活性[24].由表 2可以看出, 1b并没有表现出明显的抑菌效果, 而2b在128 μmol/L可有效抑制全部四种耐药菌繁殖.有趣的是, 3b的释放速度最慢, 其对于大肠杆菌的MIC仅为64 μmol/L, 同时还可有效杀灭枯草杆菌和肺炎克雷伯菌.
为了对比不同中心金属Fc-CORM的抗菌活性, 我们测试了全部15个Fc-CROM (50 μmol/L)对于大肠杆菌的活性(图 7).实验结果显示, 中心金属为铬的Fc-CORM (1a~1e)均可全部杀灭细菌; 中心金属为钼的Fc-CORM也表现出不错的抗菌活性, 其中2a和2b的活性略低于2c~2e, 后者的杀菌率达到100%.中心金属为钨的Fc-CORM (3a~3e)抗菌活性较低, 3c的杀菌效果最好, 抑制率为30%.肌红蛋白CO释放实验显示, Cr (1b)具有适中的CO释放速率, Mo (2b)的释放速率过快, 而W (3b)太慢.由此可看出, Cr (1b)中速释放出的CO可有效发挥杀菌作用.快速释放分子Mo (2b)的杀菌活性反而却有所降低.这可能是由于其释放CO速率过快, 大量自由CO没有与微生物有效作用, 而以气体形式离开细菌培养体系.W (3b)的CO释放速率过慢, 没能达到CO抗菌活性所需的必要浓度.综上不难看出, 调控CORM的释放动力学是提高CORM抗菌活性的有效策略.
本文报道了一类新型Fischer卡宾类一氧化碳释放分子.实验结果发现, 阴离子卡宾结构可有效调节[M (CO)5]的CO缓释动力学.Fc-CORM的水溶性可通过季铵盐的亲疏水性调节.四甲基、四乙基稳定的Fc-CORM具有较好的水溶性.肌红蛋白实验显示, 含铬Fc-CORM具有适中的CO缓释速率(t1/2, 60 μmol/L和t1/2, 40 μmol/L为500和1282 s).在体外生理环境下, 每分子Fc-CORM释放至少两个CO.抗菌实验发现, Fc-CORM的生物活性与其CO释放速度有关.对于革兰氏阴性菌大肠杆菌, 中速释放分子1a~1e的MIC为30 μmol/L; 而对于具有耐药性的大肠杆菌、肺炎克雷伯菌和革兰氏阳性菌金黄色葡萄球菌、枯草杆菌, Fc-CORM-Mo (2a~2c)和Fc-CORM-W (3a~3c)表现出一定的抗菌活性.机理研究证明, Fc-CORM的生物活性来源于其释放的CO, 而CO释放速度是其抗菌活性的关键影响因素.
恒温磁力搅拌器(S25-2, 上海司乐仪器有限公司), 傅立叶变换红外光谱仪(EQUINX55, 德国布鲁克公司), 核磁共振谱仪(德国布鲁克公司).六羰基铬, 六羰基钼, 六羰基钨(GR, 北京鸿睿天维科技有限责任公司), 甲基锂(1.6 mol/L乙醚溶液, 阿拉丁试剂有限公司), 四甲基氯化铵, 四乙基溴化铵, 四丁基溴化铵, 苄基三甲基溴化铵, 苄基三乙基溴化铵(AR, 阿拉丁试剂有限公司), 二甲亚砜, 四氢呋喃(THF, AR, 国药集团化学试剂有限公司, 无水无氧处理).
挑取大肠杆菌的单克隆菌落分别置于5 mL LB液体培养基中, 160 r/min、37 ℃摇床振荡培养13 h, 得到活化的菌液.取活化菌液离心, 用0.9% NaCl溶液试管二倍稀释法测定最小抑菌浓度(MIC).洗细菌三次, 再用0.9% NaCl溶液悬浮细菌, 稀释至OD600nm=1.0.用移液枪移取100 μL菌液、400 μL灭菌生理盐水, 再分别加入5 μL不同浓度的阴离子卡宾一氧化碳释放分子溶液, 混匀, 避光作用1 h, 然后将此溶液用PBS稀释30000倍, 吸取100 μL逐滴滴于固体培养基上, 用涂布棒涂布均匀, 37 ℃培养13 h后, 计数, 计算杀菌率.每种不同浓度的阴离子型卡宾化合物溶液对两种细菌均平行做3组试验, 同时做空白对照, 结果取平均值.
辅助材料(Supporting Information) 所有化合物的1H NMR、13C NMR图谱、一氧化碳动力学测试曲线和细菌抗菌实验数据.这些材料可以免费从本刊网站(http://sioc-journal.cn/)上下载.
使用DMSO配制浓度为1280 μg/mL的Fc-CORM母液待用; 再配制浓度为25 g/L的MH肉汤培养基, 配制抗菌实验所涉及的细菌菌液, 调节其OD值约等于1;为梯度稀释过的菌液进行接种抗菌药物, 然后在37 ℃的普通空气孵化箱中培养12~16 h, 最后做空白对照, 观察稀释管的清亮程度, 确定受测试细菌的MIC.
使用容量瓶, 将5 mg马心肌红蛋白溶解于5 mL磷酸缓冲液(PBS), 配置为母液.取1 mL母液加入半微量比色皿中, 加入少量连二亚硫酸钠将其还原为脱氧肌红蛋白(deoxy-Mb), 记录为Mb的紫外吸收光谱.然后, 向上述溶液通入CO, 即可获得饱和碳氧肌红蛋白(Mb-CO)溶液, 记录为Mb-CO的紫外光谱.使用DMSO配制Fc-CORM母液.然后得到不同浓度梯度的Fc-CORM溶液, 取5 μL配好的溶液加入蛋白溶液中, 充分混合后, 滴加1~2滴矿物油以防止蛋白氧化.将此溶液置于37.8 ℃样品仓中, 计时开始扫描溶液的紫外吸收.直至紫外吸收曲线不再变化, 停止记录数据.
[(CO)5W=C (O) CH3][N (C2H5)4](3b):合成方法同化合物1c, 淡黄色粉末(382 mg, 38%); 1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ: 3.32~3.37 (q, 8H, J=8 Hz), 2.41 (s, 3H), 1.40 (t, 12H, J=4 Hz); 13C NMR (100 MHz, CDCl3) δ: 208.78 (CO), 203.71 (CO), 57.95 (=CH3), 52.69 (CH2), 52.66 (CH2), 52.63 (CH2), 7.52 (CH3); IR (KBr) ν: 2046 (w), 1895 (vs) cm-1; MS m/z: 366.94 (M-), 338.95 (M--CO), 310.96 (M--2CO).
[(CO)5Mo=C (O) CH3][N (C2H5)4] (2b):合成方法同化合物1c, 淡黄色有金属光泽粉末(1.1356 g, 78%).1H NMR (400 MHz, CDCl3)δ: 3.36 (q, J=8 Hz, 8H), 2.34 (s, 3H), 1.38 (t, 12H); 13C NMR (100 MHz, CDCl3)δ: 211.63 (CO), 200.98 (CO), 55.56 (CH2), 52.73 (=CH3), 7.75 (CH3); IR (KBr) ν: 2045 (w), 1893 (vs) cm-1; MS m/z: 434.81 (M+Na).
[(CO)5Mo=C (O) CH3][N (C4H9)4](2c):合成方法同化合物1c, 黄色粉末(900 mg, 86.3%).m.p.55~56 ℃; 1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ: 3.25 (t, J=6 Hz, 8H), 2.33 (s, 3H), 1.63~1.71 (m, 8H), 1.44~1.45 (m, 8H), 1.02 (t, J=4 Hz, 12H); 13C NMR (100 MHz, CDCl3) δ: 211.88 (CO), 200.99 (CO), 58.96 (CH2), 55.58 (=CH3), 24.02 (CH2), 19.72 (CH2), 13.62 (CH3); IR (KBr) ν: 2043 (w), 1913 (vs) cm-1; MS m/z: 280.91 (M-), 252.91 (M--CO), 224.92 (M--2CO), 196.92 (M--3CO).
[(CO)5Mo=C (O) CH3][N (C2H5)3(C7H7)] (2e):合成方法同化合物1c, 深黄粉末(1.36 g, 72%).m.p.64~65 ℃; 1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ: 7.49 (m, 5H), 4.51 (s, 2H), 3.32 (q, 6H), 2.31 (s, 3H), 1.48 (t, 9H); 13C NMR (100 MHz, CDCl3) δ: 211.78 (CO), 200.99 (CO), 132.24 (Ph), 131.17 (Ph), 129.75 (Ph), 126.52 (Ph), 61.24 (CH2), 55.72 (CH2), 52.9 (=CH3), 8.2 (CH3); IR (KBr) ν: 2043 (w), 1901 (s) cm-1; MS m/z: 283.27 (M-+2), 252.91 (M--CO), 224.92 (M--2CO), 196.92 (M--3CO).
[(CO)5W=C (O) CH3][N (C2H5)3(C7H7)] (3e):合成方法同化合物1c, 亮黄色粉末(343 mg, 61%).m.p.62~63 ℃; 1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ: 7.42~7.25 (m, 5H), 4.47 (s, 2H), 3.29 (q, 6H, J=8 Hz), 2.37 (s, 3H), 1.47 (t, 9H, J=8 Hz); 13C NMR (100 MHz, CDCl3) δ: 208.95 (CO), 203.86 (CO), 132.14 (Ph), 131.31 (Ph), 129.84 (Ph), 126.21 (Ph), 61.21 (CH2), 58.12 (=CH3), 52.87 (CH3), 8.0 (CH3); IR (KBr) ν: 2043 (w), 1898 (s) cm-1; MS m/z: 366.94 (M-), 338.95 (M--CO), 310.95 (M--2CO), 284.96 (M--3CO)
[(CO)5Cr=C (O) CH3][N (CH3)3(C7H7)] (1d):合成方法同化合物1c, 得亮黄色粉末(300 mg, 77%).1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ: 7.52 (m, 5H), 4.65 (s, 2H), 3.25 (s, 9H), 2.44 (s, 3H); 13C NMR (100 MHz, CDCl3)δ: 211.48 (CO), 132.74 (Ph), 131.42 (Ph), 129.65 (Ph), 126.57 (Ph), 70.50 (CH2), 53.56 (CH3), 53.18 (=CH3); IR (KBr) ν: 2032 (w), 1892 (vs) cm-1; MS m/z: 234.95 ([M]-), 150.96 (M--3CO).
以[N (C4H9)4][Cr (=C (OCH3) CH3)(CO)5] (1c)的合成为例:称取1.1 g (5 mmol/L)六羰基铬加入装有磁子的反应管, 采用真空线操作技术抽真空充氮气三次, 用双头针转移入80 mL干燥THF.干冰丙酮浴冷却至-78 ℃, 向其加入3.1 mL CH3Li溶液(1.6 mol/L), 控制滴加速度, 保持反应温度.溶液由淡黄色逐渐加深直至深红色, 红外检测反应液, 保持温度直至原料全部消耗.撤去干冰浴, 自然升温至室温, 迅速加入四丁基溴化铵(5 mmol/L, 1.62 g)的水溶液, 过滤淡黄色粉末粗产品.用THF溶解, 硅藻土过滤, 加入超纯水沉淀, 过滤, 真空干燥, 得到固体产物1c(1.56 g, 65%).m.p.90~91 ℃; 1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ: 3.26 (br, 8H), 2.39 (s, 3H), 1.67 (br, 8H), 1.46 (q, J=6 Hz, 8H), 1.03 (t, J=4 Hz, 12H); 13C NMR (100 MHz, CDCl3) δ: 211.3 (CO), 58.9 (CH2), 53.1 (CH3), 23.9 (CH2), 19.7 (CH2), 13.5 (CH3); IR (KBr) ν: 2032 (m), 1900 (vs) cm-1; MS m/z: 234.93 (M-), 206.94 (M--CO), 178.94 (M--2CO), 150.95 (M--3CO), 122.95 (M--4CO).
[(CO)5W=C (O) CH3][N (CH3)4](3a):合成方法同化合物1c, 淡黄粉末(250 mg, 57%); 1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ: 3.43 (s, 12H), 2.44 (s, 3H); 13C NMR (100 MHz, CDCl3)δ: 203.66 (CO), 191.17 (CO), 58.24 (=CH3), 56.49 (CH3), 56.46 (CH3), 56.42 (CH3); IR (KBr) ν: 2048 (w), 1900 (vs) cm-1; MS m/z: 366.96 (M-), 338.96 (M--CO), 310.96 (M--2CO), 282.97 (M--3CO).
[(CO)5Cr=C (O) CH3][N (C2H5)4](1b):合成方法同化合物1c, 得淡黄色有金属光泽粉末(500 mg, 69%).1H NMR (400 MHz, CDCl3)δ: 3.32 (q, 8H), 2.38~2.17 (m, 3H), 1.37 (br, 12H); 13C NMR (100 MHz, CDCl3)δ: 211.49 (CO), 53.19 (CH2), 52.66 (=CH3), 7.48 (CH3); IR (KBr) ν: 2028 (w), 1889 (vs) cm-1; MS m/z: 262.85 (M-+23), 234.95 (M-), 206.96 (M--CO), 178.96 (M--2CO), 150.96 (M--3CO).
[(CO)5W=C (O) CH3][N (C4H9)4](3c):合成方法同化合物1c, 黄色粉末(480 mg, 72%).m.p 66~67 ℃; 1H NMR (400MHz, CDCl3) δ: 3.25 (t, 8H, J=6 Hz), 2.40 (s, 3H), 1.62~1.72 (m, 8H), 1.42~1.51 (m, 8H), 1.03 (s, 12H, J=6 Hz); 13C NMR (100 MHz, CDCl3) δ: 203.93 (CO), 191.11 (CO), 58.96 (CH2), 57.98 (=CH3), 23.96 (CH2), 19.71 (CH2), 13.58 (CH3); IR (KBr) ν: 2043 (w), 1895 (vs) cm-1; MS m/z: 366.95 (M-), 338.96 (M--CO), 310.96 (M--2CO), 282.97 (M--3CO).
[(CO)5Mo=C (O) CH3][N (CH3)3(C7H7)] (2d):合成方法同化合物1c, 深黄粉末(1.0192 g, 59.4%).1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ: 7.27~7.51 (m, 5H), 4.79 (s, 2H), 3.32 (s, 9H), 2.38 (s, 3H); 13C NMR (100 MHz, CDCl3) δ: 211.64 (CO), 200.98 (CO), 132.92 (Ph), 131.13 (Ph), 129.42 (Ph), 127.06 (Ph), 69.78 (CH2), 55.96 (CH3), 52.95 (=CH3); IR (KBr) ν: 2043 (w), 1901 (s) cm-1; MSm/z: 430.79 (M), 402.80 (M-CO), 374.80 (M-2CO).
[(CO)5Cr=C (O) CH3][N (CH3)4](1a):合成方法同化合物1c, 得淡黄色粉末(159 mg, 26%).1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ: 3.45 (s, 12H), 2.46 (s, 3H); 13C NMR (100 MHz, CDCl3) δ: 211.51 (CO), 67.97 (=CH3), 25.61 (CH3); IR (KBr) ν: 2032 (w), 1880 (vs) cm-1; MS m/z: 262.85 (M-+Na), 234.95 (M-), 206.96 (M--CO), 178.96 (M--2CO), 150.96 (M--3CO).
[(CO)5Cr=C (O) CH3][N (C2H5)3(C7H7)] (1e):合成方法同化合物1c, 得亮黄色粉末(768 mg, 90%).m.p.59~60 ℃; 1H NMR (400 MHz, CDCl3)δ: 7.52 (br, 5H), 4.47 (br, 2H), 3.31 (br, 6H), 2.40 (s, 3H), 1.50 (br, 9H); 13C NMR (100 MHz, CDCl3)δ: 211.51 (CO), 132.20 (Ph), 131.30 (Ph), 129.85 (Ph), 126.25 (Ph), 61.30 (CH2), 53.30 (CH2), 52.85 (=CH3), 8.02 (CH3); IR (KBr) ν: 2032 (w), 1875 (s) cm-1; MS/ESI (-) m/z: 370.86 [M-2CO]-; MS m/z: 234.95 (M-), 206.95 (M--CO), 178.95 (M--2CO), 150.96 (M--3CO).
[(CO)5W=C (O) CH3][N (CH3)3(C7H7)] (3d):合成方法同化合物1c, 黄色粉末(240 mg, 47%).1H NMR (400MHz, CDCl3)δ: 7.49~7.55 (m, 5H), 4.74 (s, 2H), 3.30 (s, 9H), 2.45 (s, 3H); 13C NMR (100 MHz, CDCl3) δ: 203.82 (CO), 191.30 (CO), 133.00 (Ph), 131.53 (Ph), 129.77 (Ph), 126.92 (Ph), 70.3 (CH2), 58.5 (=CH3), 53.32 (CH3), 53.32 (CH3), 53.29 (CH3), 53.25 (CH3); IR (KBr) ν: 2043 (w), 1904 (vs) cm-1; MS m/z: 366.95 (M-), 340.96 (M--CO), 310.96 (M--2CO), 282.97 (M--3CO).
[(CO)5Mo=C (O) CH3][N (CH3)4] (2a):合成方法同化合物1c, 淡黄色粉末(269 mg, 38%).1H NMR (400 MHz, CDCl3)δ: 3.73 (s, 3H), 1.84 (s, 3H); 13C NMR (100 MHz, CDCl3) δ: 201.0 (CO), 67.95 (=CH3), 25.57 (CH3); IR (KBr) ν: 2050 (w), 1907 (vs) cm-1; MS m/z: 304.81 ([M]-+Na).
García-Gallego, S.; Bernardes, G. J. L. Angew. Chem., Int. Ed. 2014, 53, 9712. doi: 10.1002/anie.201311225
Schatzschneider, U. Br. J. Pharmacol. 2015, 172, 1638. doi: 10.1111/bph.12688
Tavares, A. F. N.; Nobre, L. S.; Saraiva, L. M. FEMS Microbiol. Lett. 2012, 336, 1. doi: 10.1111/fml.2012.336.issue-1
Tavares, A. F. N.; Teixeira, M.; Romaõ, C. C.; Seixas, J. D.; Nobre, L. S.; Saraiva, L. M. J. Biol. Chem. 2011, 286, 26708. doi: 10.1074/jbc.M111.255752
Books, J. C.; Alvarado, M.; Stephens, T. P.; Kellermeier, J. D.; Tittor, A. W.; Miller, M. F.; Brashears, M. M. J. Food Proteins 2008, 71, 93.
Patra, M.; Gasser, G.; Wenzel, M.; Merz, K.; Bandow, J. E. Eur. J. Inorg. Chem. 2011, 3295.
Foresti, R.; Bani-Hani, M. G.; Motterlini, R. Intensive Care Med. 2008, 34, 649. doi: 10.1007/s00134-008-1011-1
Sandra, G. G.; Bernardes, G. J. L. Angew. Chem., Int. Ed. 2014, 53, 9712. doi: 10.1002/anie.201311225
Romaõ, C. C.; Blättler, W. A.; Seixas, J. D.; Bernardes, G. J. L. Chem. Soc. Rev. 2012, 41, 3571. doi: 10.1039/c2cs15317c
Wareham, L. K.; Poole1, R. K.; Mariana, T. T. J. Biol. Chem. 2015, 290, 18999. doi: 10.1074/jbc.R115.642926
Clark, J. E.; Naughton, P.; Shurey, S.; Green, C. J.; Johnson, T. R.; Mann, B. E.; Foresti, R.; Motterlini, R. Circ. Res. 2003, 93, e2. doi: 10.1161/01.RES.0000084381.86567.08
Nobre, L. S.; Seixas, J. D.; Romaõ, C. C.; Saraiva, L. M. Antimicrob. Agents Chemother. 2007, 4303.
Desmard, M.; Foresti, R.; Boczkowski, J.; Motterlini, R.; Sawle, P. Antioxid. Redox Signaling 2012, 16, 153. doi: 10.1089/ars.2011.3959
Zhang, W.-Q.; Atkin, A. J.; Thatcher, R. J.; Whitwood, A. C.; Fairlamb, I. J. S.; Lynam, J. M. Dalton Trans. 2009, 4351.
Zhang, W.-Q..; Whitwood, A. C.; Fairlamb, I. J. S.; Lynam, J. M. Inorg. Chem. 2010, 49, 8941. doi: 10.1021/ic101230j
Rimmer, R. D.; Richter, H.; Ford, P. C. Inorg. Chem. 2010, 49, 1180. doi: 10.1021/ic902147n
Heldt, J. M.; Nathalie, F. D.; Salmain, M.; Vessières, A.; Jaouen, G. J. Organomet. Chem. 2004, 689, 4775. doi: 10.1016/j.jorganchem.2004.09.035
Seixas, J. D.; Coelho, A. C.; Romão, C. C. Dalton Trans. 2015, 44, 5058. doi: 10.1039/C4DT02966F
Crespy, D.; Landfester, K.; Schubert, U. S.; Schiller, A. Chem. Commun. 2010, 46, 6651. doi: 10.1039/c0cc01887b
Furci, L. M.; Lopes, P.; Eakanunkul, S.; Zhong, S. J.; MacKerell, A. D.; Wilks, A. J. Med. Chem. 2007, 50, 3804. doi: 10.1021/jm0700969
Edwards, E. I.; Epton, R.; Marr, G. J. Organomet. Chem. 1979, 168, 59.
Edwards, E. I.; Epton, R.; Marr, G. J. Organomet. Chem. 1976, 122, C49. doi: 10.1016/S0022-328X(00)82406-7
Edwards, E. I.; Epton, R.; Marr, G. J. Organomet. Chem. 1975, 85, C23. doi: 10.1002/chin.197518462/abstract
Andrews, J. M. J. Antimicrob. Chemother. 2001, 48, 5. doi: 10.1093/jac/48.suppl_1.5
表 1 Fc-CORM 1a~3e的水溶性
Table 1. Water solubility of Fc-CORM 1a~3e
| M | (CH3)4 | (C2H5)4 | (C4H9)4 | (CH3)3, C7H7 | (C2H5)3, C7H7 |
| Cr | 溶解 | 溶解 | 微溶 | 溶解 | 溶解 |
| Mo | 溶解 | 溶解 | 微溶 | 微溶 | 微溶 |
| W | 溶解 | 溶解 | 微溶 | 微溶 | 微溶 |
表 2 Fc-CORM对于耐药性细菌的抑制作用
Table 2. Inhibition Effect of Fc-CORM on Drug-resistant bacteria
| 种类 | MIC (ug/mL) | ||
| Cr (1b) | Mo (2b) | W (3b) | |
| 金色葡萄球菌 | n.d.a | 128 | n.d. |
| 大肠杆菌 | n.d | 128 | 64 |
| 枯草杆菌 | n.d | 128 | 128 |
| 肺炎克雷伯菌 | n.d | 128 | 128 |
| a n.d.=not detected. | |||
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