使用新型耦合活化剂Oxyma高效合成利拉鲁肽

王风亮 许玲 储国超 石景 郭庆祥

引用本文: 王风亮, 许玲, 储国超, 石景, 郭庆祥. 使用新型耦合活化剂Oxyma高效合成利拉鲁肽[J]. 有机化学, 2015, 36(1): 218-221. doi: 10.6023/cjoc201505014 shu
Citation:  Wang Fengliang, Xu Ling, Chu Guochao, Shi Jing, Guo Qingxiang. Efficient Synthesis of Liraglutide by Using Oxyma as Coupling Reagent[J]. Chinese Journal of Organic Chemistry, 2015, 36(1): 218-221. doi: 10.6023/cjoc201505014 shu

使用新型耦合活化剂Oxyma高效合成利拉鲁肽

    通讯作者: 石景, E-mail: shijing@ustc.edu.cn; 郭庆祥, E-mail: qxguo@ustc.edu.cn
  • 基金项目:

    国家自然科学基金 21272223

    国家自然科学基金 21572214

摘要: Oxyma作为一种重要的新型耦合活化剂, 相比于HOBt, HOAt等传统活化剂具有在多肽偶联反应中消旋率较低及耦合效率更高等优势.本研究使用Oxyma作为耦合活化剂在树脂上一次性合成了具有治疗糖尿病功能的多肽药物利拉鲁肽(Liraglutide), 且具有较高的合成效率.该策略的运用为使用化学方法大规模合成Liraglutide提供了可能.

English

  • 

    利拉鲁肽(Liraglutide)是一类重要的用于治疗糖尿病的多肽类药物, 在降低血糖、促进胰岛细胞再生等方面发挥着非常重要的作用[14].该药物的设计来源于人类胰高血糖素样肽1(GLP-1), 设计者将其34位赖氨酸替换为精氨酸, 并对26位赖氨酸由谷氨酸介导发生棕榈酰化, 该策略大大延长了Liraglutide在体内的半衰期, 为Liraglutide成为具有较高药效的多肽药物提供了可能[15].目前该药已在2011年4月获得了中国国家食品药品监督管理局(SFDA)批准上市, 应用于治疗2型糖尿病患者[16].

    多肽固相合成是通过在固相载体上逐个添加氨基酸以合成所需的目标多肽的方法[1], 相比于多肽液相合成技术, 该方法具有易分离, 操作简便等优势[2], 其中使用最广泛的是基于9-芴甲氧羰基(Fmoc)的固相合成方法[3].近年来, 使用Fmoc固相合成技术已经可以大量获得纯度较高的多肽及蛋白质, 而该技术也已被广泛运用于多肽药物的合成中[4].在氨基酸偶联过程中, 使用最广泛的活化剂为苯并三氮唑类, 例如1-羟基苯并三唑(HOBt)[5]、1-羟基-7-偶氮苯并三氮唑(HOAt)[6]等, 但这些活化剂都具有各自的缺陷[7].此外, O-苯并三氮唑-2-四甲基脲六氟磷酸盐(HBTU)、O-(6-氯苯并三氮唑)-1, 1, 3, 3-四甲基脲六氟磷酸酯(HCTU)、O-(7-偶氮苯并三氮唑)-N, N, N', N'-四甲基脲六氟磷酸酯(HATU)等也是经常使用的一类鎓盐缩合剂, 而且缩合效率相较于HOBt更高[8].近期, 有研究发现了一种新型的缩合剂2-肟氰乙酸乙酯(Oxyma), 在多肽耦合中显示出更高的效率, 且使用的安全性更高[9].而且相比于HOBt, HOAt, HCTU等缩合剂, 使用Oxyma合成的多肽具有更低的消旋率, 且可以与高温耦合策略较好地兼容[10].此外, 对于超过40个氨基酸的长肽合成也表现出更好的稳定性.近期, Oxyma被用来缩合合成各类多肽物质, 例如, 抗菌的环脂肽[11]、刺激神经组织的多肽Nobilamide B[12]及用于生物标记的呫吨染料[13]等.该耦合活化剂的使用将为多肽药物的高效化学合成带来更多的选择及帮助[9].

    早期研究人员为得到纯度较高的Liraglutide, 采用了固-液相结合的方法, 即Liraglutide的主链采用固相合成.此后将预先制备好的谷氨酸-棕榈酸在液相中与Liraglutide中26位赖氨酸的侧链发生缩合, 进一步得到完整的Liraglutide多肽[16].该方法的主要缺点在于, 合成路线较为复杂, 操作繁琐, 且采用的液相偶联策略不易分离, 使得合成产率较低.本研究以Oxyma作为耦合活化剂, 可以在树脂上完成Liraglutide的一次性全合成, 操作步骤简单, 易分离, 可以较为高效地获得Lirag-lutide.

    1    结果与讨论

    图1 Liraglutide的合成策略

    Figure 1. The chemical synthesis of liraglutide

    总体来说, 我们首先使用多肽固相合成(SPPS)策略, 以Oxyma作为耦合活化剂合成Liraglutide主链片段(1a), 在此过程中对赖氨酸的侧链使用特殊保护基保护.此后将赖氨酸侧链保护基脱除并耦合谷氨酸(1b), 进一步使用Oxyma耦合棕榈酸(1c), 实现在树脂上一次性全合成Liraglutide(图 1).

    1.1    Liraglutide主链片段的合成

    使用Oxyma作为活化剂从C端到N端合成Liraglutide的主链片段, 其中赖氨酸侧链使用Mtt保护基保护[Fmoc-Lys(Mtt)-OH].在耦连上最后一个氨基酸后, 脱除Fmoc基团并上Boc基团保护.在树脂上切割后(切割液为: 88% TFA, 5%苯酚, 5%水, 2% TIPS)得到粗肽(1a)560 mg, 产率约为66%.粗肽样品使用液相色谱(HPLC)进行纯化, 并通过质谱(ESI-MS)进一步确认分子量正确(图 2).

    图2 色谱及质谱纯化、鉴定liraglutide (1a)主链

    Figure 2. HPLC and ESI-MS analysis of the main chain of liraglutide (1a)

    1.2    侧链保护基Mtt的切割及谷氨酸的缩合

    在得到主链产物之后需要脱除Mtt保护基以便进行后续谷氨酸及棕榈酸的耦合.最初使用3% TFA切割20min后再正常耦合谷氨酸, 实验结果发现将近80%的主链多肽未发生反应.我们认为是由于Mtt没有切割完全所致, 故需要进一步增加切割时间.在改用3% TFA切割40 min后产物峰明细增加, 但仍有30%的主链多肽未反应.进一步延长反应时间至切割60 min后色谱结果显示主链产物基本反应完全(图 3), 此后再延长切割反应的时间, 产率并未增加.在获得脱除了Mtt保护基的主链产物后, 我们进一步在26位赖氨酸侧链耦合上谷氨酸, 以便之后进行棕榈酸的偶联, 可以较为高效地获得产物1b, 产率约为90%.

    图3 3% TFA切割赖氨酸侧链Mtt保护基的效率图

    Figure 3. The efficiency diagram of the cleavage for Lys side chain Mtt protecting group by using 3% TFA

    1.3    棕榈酸的缩合-耦合效率的比较

    图4 Oxyma和HCTU与棕榈酸耦合的效率比较

    Figure 4. The synthesis of full chain of liraglutide by using coupling reagent for coupling with palmitic acid

    基于此, 一次固相全合成全长Liraglutide的步骤如下:首先使用Oxyma作为耦合活化剂完成主链氨基酸的偶联, 以3% TFA切割赖氨酸上的Mtt保护基60 min(以20 min切割3次为最佳).之后使用Oxyma分别耦合谷氨酸、棕榈酸可得到粗肽580 mg, 使用半制备色谱纯化后得到纯肽194 mg, 总产率约为20.7%.产物经HPLC纯化后使用ESI-MS确定其分子量正确(图 4).

    在获得耦合了谷氨酸的产物后(1b), 为了进一步在侧链上高效耦合棕榈酸, 我们分别尝试使用HCTU, Oxyma对棕榈酸进行缩合.实验结果表明(图 4)使用HCTU作为缩合剂时, 只有40%的谷氨酸能够完全接上棕榈酸.而使用Oxyma来耦合棕榈酸, 发现原料1b可以完全转变为产物1c, 说明棕榈酸能够几乎完全与谷氨酸偶联.

    1.4    Liraglutide的MS/MS谱图

    图5 Liraglutide的MS/MS谱图

    Figure 5. The MS/MS spectrogram of liraglutide

    获得产物1c后, 我们进一步测定了产物的串联质谱(MS/MS), 并通过解析得到了MS/MS谱图(图 5), 确定产物1c的氨基酸序列与Liraglutide一致.

    2    结论

    利拉鲁肽是一种用于治疗糖尿病的多肽药物, 具有较好的市场价值.目前生产该药物所采用的固-液相相结合的方法存在操作繁琐、分离纯化困难且合成效率较低等缺陷.本研究使用Oxyma作为耦合活化剂, 高效地在固相树脂上实现一次性全合成Liraglutide, 且相比于前人的策略, 在很大程度上提高了合成效率.同时, 本研究证明Oxyma作为一种高效的耦合活化剂, 能够较为成功地应用于长肽的合成中, 并且相比于其它类型的活化剂具有更高的耦合效率.

    3    实验部分

    3.1    仪器与试剂

    分析型与半制备型HPLC为岛津(Prominence LC-20AT), 且分析型与半制备型色谱柱均使用Grace Vydac “Peptide C18”.分析型色谱柱大小为150 mm×4.6 mm, 半制备型则为250 mm×10 mm.两者的流动相A均为含有0.08% TFA的乙腈, 流动相B则是含有0.1% TFA的水, 紫外检测器均使用214和254 nm波长进行检测.分析型HPLC采用乙腈浓度为1%~91%的梯度洗脱, 流速1.2 mL/min, 梯度时间为30 min.半制备型HPLC采用乙腈浓度为1%~69%的梯度洗脱, 流速4.0 mL/min梯度时间为50 min.除特殊说明, 本实验所采用试剂均使用市售分析纯试剂.

    3.2    实验方法

    3.2.3    棕榈酸的缩合

    耦合完Glu之后, 仍用20%的哌啶切割Fmoc基团, DMF, DCM, DMF洗涤后分别用HCTU, Oxyma耦合棕榈酸, 反应1 h后得到最终的产物.DMF, DCM洗涤后, 使用8 mL的切割试剂(88% TFA, 5%苯酚, 5%水, 2% TIPS)切割多肽, 反应2 h.之后将切割液聚集于50 mL离心管内, 氮气鼓吹浓缩, 再使用冰乙醚沉淀、离心, 置于室温晾干后得到粗肽.最后使用半制备型HPLC得到纯肽.

    辅助材料(Supporting Information)   Liraglutide主链片段和全长质的谱图, 以及Liragltide的CD谱图.这些材料可以免费从本刊网站(http://sioc-journal.cn/)上下载.

    3.2.1    Liraglutide主链的合成

    称取0.454 g 2-Cl-Trt(Cl)树脂(取代度为0.55 mmol/g)于固相合成管内, 使用5 mL N, N-二甲基甲酰胺(DMF)洗涤树脂3次, 之后用10 mL N, N-二甲基甲酰胺(DMF)与二氯甲烷(DCM)的混合液(V:V=1:1)溶胀10 min.之后抽干树脂, 加入Liralutide C-末端第一个氨基酸Fmoc-Gly(4 equiv.氨基酸, 8 equiv.DIEA), 反应两次, 每次各为1 h.反应完毕后加入2 mL甲醇继续反应10 min.之后用DMF, DCM, DMF各洗5次, 加入5 mL 20%哌啶切割Fmoc基团, 反应两次, 分别为2, 10 min, 再用DMF, DCM, DMF各洗5次, 加入C末端第二个氨基酸Arg(4 equiv.氨基酸, 3.6 equiv.HCTU, 8 equiv.DIEA), 若用Oxyma活化, 添加为4 equiv.氨基酸, 4 equiv.Oxyma, 4 equiv.DIC, 预活化10 min, 90 ℃高温反应20 min(此高温反应不可用于Arg, 且His室温反应45 min, 而Cys则为50 ℃反应).其中肽链中部的赖氨酸则用Fmoc-Lys(Mtt)-OH按正常氨基酸连接.接完最后一个氨基酸后脱除Fmoc基团, 加入Boc/DIEA体积比为1/4的反应液, 反应两次, 时间分别为5, 10 min.

    3.2.2    侧链保护基Mtt的切割及谷氨酸的缩合

    赖氨酸侧链保护基Mtt由于受酸敏感, 使用3% TFA溶于DCM进行切割, 分别切割20 min一次, 40 min(20 min两次), 60 min(20 min三次).此后使用Oxyma(方法同上述)耦合Fmoc-Glu-OtBu形成异肽键.

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  • 图 1  Liraglutide的合成策略

    Figure 1  The chemical synthesis of liraglutide

    图 2  色谱及质谱纯化、鉴定liraglutide (1a)主链

    Figure 2  HPLC and ESI-MS analysis of the main chain of liraglutide (1a)

    图 3  3% TFA切割赖氨酸侧链Mtt保护基的效率图

    Figure 3  The efficiency diagram of the cleavage for Lys side chain Mtt protecting group by using 3% TFA

    图 4  Oxyma和HCTU与棕榈酸耦合的效率比较

    Figure 4  The synthesis of full chain of liraglutide by using coupling reagent for coupling with palmitic acid

    (A) HCTU coupling with palmitic acid; (B) Oxyma coupling with palmitic acid; (C) full length purified liraglutide

    图 5  Liraglutide的MS/MS谱图

    Figure 5  The MS/MS spectrogram of liraglutide

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  • 收稿日期:  2015-05-08
  • 修回日期:  2015-08-03
通讯作者: 陈斌, bchen63@163.com
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    沈阳化工大学材料科学与工程学院 沈阳 110142

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