碱蒸馏/超声波衍生化-气相色谱-质谱法测定土壤中的偏二甲肼

冯长根 廖琪丽 王力

引用本文: 冯长根,  廖琪丽,  王力. 碱蒸馏/超声波衍生化-气相色谱-质谱法测定土壤中的偏二甲肼[J]. 分析化学, 2016, 44(9): 1425-1431. doi: 10.11895/j.issn.0253-3820.160062 shu
Citation:  FENG Chang-Gen,  LIAO Qi-Li,  WANG Li. Determination of Unsymmetrical Dimethylhydrazine in Soil by Gas Chromatography-Mass Spectrometry with the Pretreatment of Alkaline Distillation and Ultrasonic Derivatization[J]. Chinese Journal of Analytical Chemistry, 2016, 44(9): 1425-1431. doi: 10.11895/j.issn.0253-3820.160062 shu

碱蒸馏/超声波衍生化-气相色谱-质谱法测定土壤中的偏二甲肼

  • 基金项目:

    本文系中国人民解放军总后勤部重点资助项目提供资助(No.BEP14C002)

摘要: 建立了碱蒸馏/超声波衍生化预处理的气相色谱-质谱法测定土壤中偏二甲肼的分析方法。通过碱蒸馏预处理方法,以水杨醛为衍生化试剂,采用超声波加速衍生化反应,在选择离子检测(SIM)模式下进行定量分析,衍生化产物的特征离子为m/z 164。考察了碱蒸馏、超声波衍生化条件的影响,并对衍生化条件进行优化,方法的线性范围在0.4~30 mg/L之间,方法检出限为0.0078 mg/kg。以此方法测定已知浓度的土壤样品,目标化合物的含量在10~100 mg/kg之间,回收率在76%~108%之间,相对标准偏差在12%~19%之间。与分光光度法、索氏提取/超声波衍生化-气相色谱-质谱法相比较,本方法检出限显著优于二者。

English

  • 偏二甲肼(Unsymmetrical dimethylhydrazine,UDMH)是一种重要的液体火箭推进剂,俄罗斯、印度和中国等将其用作大推力运载火箭的主体燃料[1]。UDMH属于高毒、致癌、致畸物质[2]。动物实验表明,UDMH能够引起肺癌和肝癌,其主要影响的器官包括皮肤、肺、上呼吸道、消化系统等[3~5]。在美国,UDMH被列类为2B类致癌物质[6];在俄罗斯,UDMH的环境排放受到了严格监管,规定在水中的最大允许浓度为0.02 mg/L,在土壤中为0.1 mg/kg[7, 8];在我国,UDMH于2003年被列入高毒物质名录,并建立了专门的环境污水排放标准(GB14374-1993)[9]。尽管UDMH存在高毒、高污染的缺点,但是由于UDMH具有能量高、比冲大的独特物化特性,其仍将作为重要火箭推进剂保留使用25~50年[7]

    目前,检测土壤中UDMH的分析方法主要采用色谱法,常见的预处理方法有顶空固相微萃取法(SPME)、液固萃取、衍生化法等[10~13],使用色谱联用技术,配合更为高效预处理方法,正成为推进剂土壤环境检测技术的未来发展方向。本研究采用碱蒸馏预处理方法,通过使用超声波加速UDMH 与衍生化试剂水杨醛发生化学反应的速度,生成稳定的衍生化产物,利用气相色谱-质谱法(GC-MS)进行定量分析,从而实现土壤中UDMH 的分析检测。

    Agilent 6890N/5973N气相色谱-质谱仪 (配备HP 7683 自动进样器);HW-02 精密恒温水浴 (上海百典仪器公司); 超声清洗器 (上海昆山公司,配备50 kHz、100 W/cm2 超声波源)。

    UDMH (纯度≥98%,中国航天科技集团推进剂研究中心提供);水杨醛、Na2S·9H2O、NaOH、H2SO4 (分析纯,北京京文试剂公司);偏腙 (99.8%,安徽淮南化工厂)。

    HP-5MS (5% 苯甲基硅烷) 石英毛细管柱(30 m×0.25 mm×0.25 μm),载气为高纯氦气,流量为1.0 mL/min,总流量为54 mL/min,恒流模式;进样模式为不分流,时间为0.7 min,进样体积为1 μL;进样口温度为180℃;色谱柱的初始温度为40℃,以20℃/min程序升温至100℃,然后以6℃/min升温至250℃,保持2 min,总运行时间为30 min。质谱的离子源为EI,电离能量为70 eV;离子源温度为230℃,四极杆温度为150℃,接口温度为280℃,调谐模式为自动调谐,溶剂延迟为8 min。

    取适量UDMH 于容量瓶中,加超纯水配制成2.034 g/L UDMH标准储备液。用超纯水稀释,配制UDMH系列标准溶液,加入0.1 mol/L H2SO4溶液1 mL,定容至10 mL。

    受调查土壤于2014年2月采自北京奥林匹克森林公园地表以下5~10 cm处。所采集的土壤经碱蒸馏/超声波衍生化-GC/MS方法检测不含UDMH。实验前,土壤风干,过2 mm筛,均匀搅拌。按照文献[14]的方法检测土壤的物化参数,结果见表 1

    表 1

    表 1  所用土壤样品的物化参数
    Table 1.  Physical and chemical parameters of soil used in this experiment
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    参数 Parameters检测值 Values
    沙粒 Sand (2000~50 μm)(%)48.8
    粉粒 Particles (<0~2 μm) (%)35.5
    粘粒 Clay (<2 μm) (%)15.7
    密度 Density(g/cm3)1.55
    pH (in water) 7.63
    持水量 Water-holding capacity (%)23.04
    有机质含量 Organic matter content (%)1.26
    总氮含量 Total nitrogen content (%)0.11

    “污染”土壤制备:取适量 UDMH标准液,定容至20 mL,使用专用注射器将其喷洒到5 g土壤样本表面,产生非常小的液滴,以保证溶液与土壤充分混合,充分振荡20 min,配成“污染”土壤样品。

    土壤样品的碱蒸馏:将5 g“污染”土壤样本,2 g Na2S·9H2O,50 mL 40% NaOH溶液放置到一个250 mL蒸馏瓶中,在氮气保护下蒸馏至干,馏分收集到150 mL三角瓶中,其中装有10 mL 0.1 mol/L H2SO4溶液。

    超声波衍生化:将所有收集到的溶液移入100 mL容量瓶中,定容。取10 mL溶液到一个25 mL具塞比色管中,加入0.2 mL水杨醛。使用50 kHz、80 W/cm2的超声波源进行催化衍生化,控制温度为50℃,衍生化1 h后,取出比色管,冷却至室温。加入2.5 g NaCl,充分振荡使之溶解。用5 mL二氯甲烷萃取衍生化产物水杨醛二甲基腙。在充分振荡后,所有溶液被移入20 mL分液漏斗中。振荡5 min,静置10 min分层。取1 mL 二氯甲烷层萃取液进行GC/MS分析。

    衍生化反应方程式为:

    图 1为200 mg/kg UDMH污染土壤在配制2 h后,用碱蒸馏/超声波衍生化方法进行样品预处理,用SCAN 方式测得的总离子流图。EI 源轰击使水杨醛二甲基腙形成的高丰度分子离子为[(CH3)2NNC7H5OH]+ (m/z 164)。由此确定其特征离子为m/z 164,保留时间为12.42 min,采用SIM模式进行定量分析。

    图 1

    图 1  衍生化产物总离子流色谱图
    Figure 1.  Total ion chromatogram of derivatization product

    UDMH具有很强的挥发性和较低的化学稳定性,除了会被空气中的氧气氧化,还能与土壤中固相颗粒发生物理化学吸附、与金属离子发生催化氧化反应、与有机质发生化学反应,因此不可能得到稳定的、特定浓度的干燥加标土样[15]。为了得到浓度相对稳定的UDMH土壤样品,应使土壤样本中的水含量达到饱和,以形成水封,这就要求土样中添加的溶液量较大,即5 g土壤加20 mL UDMH溶液。

    Rodin等[15]曾将土壤中的UDMH分为“游离UDMH”(Free UDMH)和“总UDMH”(Total UDMH)。“游离UDMH”是指存在于土壤液体中的UDMH,以及存在于液固相之间的自由UDMH。“总UDMH”是指土壤中所有形态的UDMH,它包含“游离UDMH”和固相束缚的UDMH。研究表明,土壤在碱性环境下能充分释放被土壤金属离子和有机基质挟持的UDMH,因此土样应在保证足够高的碱度下蒸馏,使碱液与UDMH充分接触,以将UDMH从土壤中解析出来[16],使用碱蒸法能够有效解决土壤中UDMH被吸附的问题,如图 2

    图 2

    图 2  碱蒸馏预处理方法对UDMH土壤样品萃取的影响
    Figure 2.  Influence of alkaline distillation pretrement on unsymmetrical dimethylhydrazine (UDMH) soil sample extraction

    UDMH在环境中能够转化为多种不同类型的中间产物,其中相当一部分为活性转化产物,这些物质含有UDMH的结构片段,在酸性或碱性条件下,能够水解生成初始的UDMH[17]。目前,已知的较为重要的活性转化产物是偏腙,它能够被氧化生成一系列的UMDH氧化副产物[18]。在碱蒸馏条件下,偏腙对UDMH的转化情况还不明确,有必要考察碱蒸馏预处理方法对偏腙转化成UDMH的影响。

    取20 mL偏腙的二氯甲烷标准溶液,加入到含有5 g土壤的密闭顶空瓶中,充分振荡1 h后,置于通风橱内风干。按照2.4节的方法进行碱蒸馏和超声波衍生化后,进行GC/MS分析,得到溶液中UDMH的量(m)。则偏腙在碱蒸馏条件下,转化为UDMH的转化率为:

    式中,M为偏腙加入量,60为偏二甲肼的分子量,72为偏腙的分子量。检测结果如表 2所示,在偏腙浓度较低的情况下,未检出UDMH;在偏腙浓度很高的情况下,碱蒸馏预处理方法会造成土壤中UDMH浓度的增加。实际上,在水封条件下,UDMH氧化生成偏腙的反应受到了极大抑制,生成偏腙的量很有限,转化的影响处于可以控制的范围内,不会对土壤中UDMH的浓度造成太大影响。

    表 2

    表 2  碱蒸馏预处理方法对偏腙浓度的影响
    Table 2.  Influence of alkaline distillation pretreatment on the concentration of formaldehyde 1,1-dimethylhydrazone
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    分析物Analyte加入量Added(μg)UDMH的量Transformed UDMH(μg)转化率Transformation rate(%)
    偏腙F20
    ormaldehyde 1,1-dimethylhydrazone2006438.4

    按方法所给出的GC-MS条件,将UDMH 的系列标准溶液衍生化后进行测定,以峰面积对标准溶液的质量浓度绘制工作曲线,求得线性回归方程y=8.31×103x-3.25×104,UDMH浓度在0.4~30 mg/L浓度范围内具有良好的线性(相关系数R2>0.997)。以基质稀释液标准曲线上最低出峰时的3倍信噪比(S/N=3),求得方法的检出限为 0.0078 mg/kg。改变加入土壤中UDMH的量,在土样中添加UDMH的浓度为10和100 mg/kg,每个加标样品平行测定3次,考察方法的回收率。加标回收率和精密度结果见表 3。土壤中UDMH的加标回收率为76%~108%,相对标准偏差12%~19%。

    表 3

    表 3  方法的回收率和精密度(n=3)
    Table 3.  Result of recovery and precision test (n=3)
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    加入量Added(mg/kg)测得值Found(mg/kg)回收率Recovery( %)相对标准偏差RSD(%)
    108.110.87.676.0~108.019
    10092.183.1104.883.1~104.812

    表 4可见,针对不同环境介质中UDMH的检测,以衍生化-色谱分析方法为主。目前,我国针对土壤UDMH的分析检测通常采用过滤/分光光度法[29];而索氏提取预处理方法通常被用于测定土壤中有机物的浓度。为了比较本方法与这两种常见方法的不同,进行了针对性研究。

    表 4

    表 4  不同环境中UDMH的分析检测方法
    Table 4.  Summary of the current analytical methods for determination of UDMH in environmental samples
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    分析方法Analyticalmethod样品预处理方法Sample preparation介质Matrix检出限Detection limit参考文献Reference
    GC-NPD使用丙酮酸酸性物质混合物进行萃取Extraction with a mixture of acetone-acidic substance土壤Soil5~16 μg/kg[10]
    GC-FID使用4-硝基苯甲醛衍生化Derivatization with 4-nitrobenzaldehyde土壤Soil10 μg/kg [11]
    GC-MS顶空固相微萃取HS-SPME土壤Soil只进行定性分析Only qualitative analysis[12]
    GC-MS首先使用二氯甲烷萃取,然后使用丙酮衍生化Extraction with dichloromethane,and then derivatization with acetone水WaterN/A[24]
    HPLC-DAD用 4-氯-5,7- 硝基苯并呋喃衍生化Derivatization with 4-Chloro-5,7-nitrobenzofurazan水Water3μg/L[25]
    Inverseds HPLC用4-硝基苯甲醛衍生化Derivatization with 4-nitrobenzaldehyde水Water120 μg/L[26]
    IC-AD蒸馏Distillation土壤80 μg/kg[13]
    GC-NPD用4-硝基苯甲醛衍生化Derivatization with 4-nitrobenzaldehyde水Water0.03 μg/L[27]
    GC-MS用2-硝基苯甲醛衍生化,使用甲醇溶液进行吸收Derivatization with 2-nitrobenzaldehyde,and absorption with methanol solution空气Air9.5 ng/m3[28]

    过滤/分光光度法:简称分光法,取5 g“污染”土壤样品,加入50 mL超纯水,充分搅拌10 min后,使用溶剂过滤器进行过滤,滤膜孔径为0.4 μm,直径为47 mm。收集过滤液,定容至100 mL。按照GB 14374-1993 所规定方法进行检测,显色剂为氨基铁氰化钠(TPF)。

    索氏提取/超声波衍生化-GC/MS法:简称索氏提取法,取5 g“污染”土壤样品,按照文献[30],使用二氯甲烷为溶剂,对土壤中的UDMH进行索氏提取,收集萃取液,加入7 g无水Na2SO4,使用滤膜过滤器进行过滤后,超声波衍生化。

    配制两种恒定浓度的UDMH“污染”土壤样品,按照不同方法同时测定样品,每份样品重复测定3次,结果见表 5。在UDMH高浓度的情况下,与两种方法测定结果进行F检验。结果表明,本方法与分光法、索氏提取法检测结果无显著性差异,但本方法的检出限显著优于二者。分光法和索氏提取法主要测定的是“游离UDMH浓度”,碱蒸馏-超声波衍生化/GC/MS法可测定“总UDMH浓度”。在高浓度下,土壤相中的UDMH达到饱和,“游离UDMH”的浓度接近“总UDMH”;在低浓度条件下,UDMH主要被土壤吸附,游离UDMH的量很少,因此“总UDMH”浓度远远大于“游离UDMH”的浓度,此时,使用碱蒸馏法能够测出土壤中的UDMH浓度,而分光法和索氏提取法不能取得分析结果(图 2)。

    表 5

    表 5  本方法与过滤/分光光度法和索氏提取/超声波衍生化-GC/MS法测定结果比较
    Table 5.  Comparision of determination results of filtration /spectrophotometry and Soxhlet extraction-ultrasonic derivatization /GC-MS and this method
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    样品Sample(mg/kg)过滤/分光光度法Filtration/spectrophotometry索氏提取/超声波衍生化-GC/MSSoxhlet extraction/ultrasonicderivatization-GC/MS碱蒸馏/超声波衍生化-GC/MSAlkaline Distillation/ultrasonicderivatization-GC/MS
    平均值Mean(mg/kg)相对标准偏差RSD(%)平均值Mean(mg/kg)相对标准偏差RSD(%)平均值Mean(mg/kg)相对标准偏差RSD(%)
    108.819
    100122.31390.51593.312

    按2.4节方法,在相同反应时间(45 min)内,比较衍生化温度为30℃,40℃,50℃和60℃时,衍生物水杨醛二甲基腙的峰面积。结果表明,温度越高,生成的水杨醛二甲基腙的峰面积越大,说明衍生物产率越高。但温度达到60℃时,已经接近UDMH的沸点(63℃),反而会促进溶液中UDMH挥发,影响衍生化效果,因此衍生化反应温度选择为50℃。

    按2.4节方法,在相同温度(50℃)下,比较衍生化时间为40,50,60和80 min 时,衍生物水杨醛二甲基腙的峰面积。结果表明,衍生化反应时间越长,衍生物的峰面积越大。但当衍生化时间超过60 min,衍生物水杨醛二甲基腙的峰面积无显著变化,因此选择60 min 为衍生化反应时间。

    由于UDMH的高极性、低沸点、强吸附性,直接使用GC或HPLC通常无法直接检测UDMH。以反相HPLC为例,UDMH在色谱柱上常有较弱的保留。因此,使用色谱方法测定UDMH常采用衍生化法[19~21]。在色谱分析中,衍生化法能够提高分析检测灵敏度,改善UDMH与溶剂的分离效果。超声波能加速衍生化反应的速度,主要利用超声波的机械作用和空化作用,加强传质过程,增加衍生化试剂在UDMH溶液的渗透性,节省时间[22]

    对于GC/MS分析而言,由于UDMH的强极性和较强的挥发性,UDMH的样品峰容易受到溶剂的影响[23]图 3是采用二氯甲烷、甲醇为溶剂,使用索氏提取方法萃取土壤中UDMH的总离子流图。尽管UDMH能够形成较大的峰,但是其与溶剂峰的分离度不佳,在UDMH低浓度或痕量检测时,不能进行定量分析检测。常温下,水杨醛是液体,作为衍生化试剂时,可以直接添加到溶液中进行衍生化反应,与4-硝基苯甲醛相比,省去了使用有机溶剂进行溶解的步骤。

    图 3

    图 3  不同溶剂萃取UDMH的总离子流图
    Figure 3.  Total ion chromatogram in the extraction of UDMH with different solvent

    本研究采用碱蒸馏/超声波衍生化方法对UDMH土壤样品进行预处理,解决了目前国内土壤中低浓度UDMH无法进行分析检测的问题。用水封的方法解决了UDMH在土壤中容易发生土壤金属离子催化氧化、土壤吸附,而导致其土壤中浓度发生变化,土壤标准样品无法制备的问题。碱蒸馏方法能够释放被土壤吸附的UDMH,而且不受主要降解产物偏腙的影响。使用衍生化方法提高了检测灵敏度,避免了在GC/MS分析中UDMH与溶剂无法有效分离的问题。

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  • Figure 1  Total ion chromatogram of derivatization product

    Figure 2  Influence of alkaline distillation pretrement on unsymmetrical dimethylhydrazine (UDMH) soil sample extraction

    Figure 3  Total ion chromatogram in the extraction of UDMH with different solvent

    (a)溶剂为二氯甲烷,(b)溶剂为甲醇

    (a) Dichloromethane as solvent,(b) Methanol as solvent. 1,Dichloromethane; 2,UDMH; 3,Methanol

    Table 1.  Physical and chemical parameters of soil used in this experiment

    参数 Parameters检测值 Values
    沙粒 Sand (2000~50 μm)(%)48.8
    粉粒 Particles (<0~2 μm) (%)35.5
    粘粒 Clay (<2 μm) (%)15.7
    密度 Density(g/cm3)1.55
    pH (in water) 7.63
    持水量 Water-holding capacity (%)23.04
    有机质含量 Organic matter content (%)1.26
    总氮含量 Total nitrogen content (%)0.11
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    Table 2.  Influence of alkaline distillation pretreatment on the concentration of formaldehyde 1,1-dimethylhydrazone

    分析物Analyte加入量Added(μg)UDMH的量Transformed UDMH(μg)转化率Transformation rate(%)
    偏腙F20
    ormaldehyde 1,1-dimethylhydrazone2006438.4
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    Table 3.  Result of recovery and precision test (n=3)

    加入量Added(mg/kg)测得值Found(mg/kg)回收率Recovery( %)相对标准偏差RSD(%)
    108.110.87.676.0~108.019
    10092.183.1104.883.1~104.812
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    Table 4.  Summary of the current analytical methods for determination of UDMH in environmental samples

    分析方法Analyticalmethod样品预处理方法Sample preparation介质Matrix检出限Detection limit参考文献Reference
    GC-NPD使用丙酮酸酸性物质混合物进行萃取Extraction with a mixture of acetone-acidic substance土壤Soil5~16 μg/kg[10]
    GC-FID使用4-硝基苯甲醛衍生化Derivatization with 4-nitrobenzaldehyde土壤Soil10 μg/kg [11]
    GC-MS顶空固相微萃取HS-SPME土壤Soil只进行定性分析Only qualitative analysis[12]
    GC-MS首先使用二氯甲烷萃取,然后使用丙酮衍生化Extraction with dichloromethane,and then derivatization with acetone水WaterN/A[24]
    HPLC-DAD用 4-氯-5,7- 硝基苯并呋喃衍生化Derivatization with 4-Chloro-5,7-nitrobenzofurazan水Water3μg/L[25]
    Inverseds HPLC用4-硝基苯甲醛衍生化Derivatization with 4-nitrobenzaldehyde水Water120 μg/L[26]
    IC-AD蒸馏Distillation土壤80 μg/kg[13]
    GC-NPD用4-硝基苯甲醛衍生化Derivatization with 4-nitrobenzaldehyde水Water0.03 μg/L[27]
    GC-MS用2-硝基苯甲醛衍生化,使用甲醇溶液进行吸收Derivatization with 2-nitrobenzaldehyde,and absorption with methanol solution空气Air9.5 ng/m3[28]
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    Table 5.  Comparision of determination results of filtration /spectrophotometry and Soxhlet extraction-ultrasonic derivatization /GC-MS and this method

    样品Sample(mg/kg)过滤/分光光度法Filtration/spectrophotometry索氏提取/超声波衍生化-GC/MSSoxhlet extraction/ultrasonicderivatization-GC/MS碱蒸馏/超声波衍生化-GC/MSAlkaline Distillation/ultrasonicderivatization-GC/MS
    平均值Mean(mg/kg)相对标准偏差RSD(%)平均值Mean(mg/kg)相对标准偏差RSD(%)平均值Mean(mg/kg)相对标准偏差RSD(%)
    108.819
    100122.31390.51593.312
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  • 收稿日期:  2016-01-23
  • 修回日期:  2016-05-18
通讯作者: 陈斌, bchen63@163.com
  • 1. 

    沈阳化工大学材料科学与工程学院 沈阳 110142

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