固相萃取-大体积进样-气相色谱法定量分析油茶籽油中的矿物油

刘玲玲 武彦文 李冰宁 汪雨 杨一帆 祖文川 王欣欣

引用本文: 刘玲玲,  武彦文,  李冰宁,  汪雨,  杨一帆,  祖文川,  王欣欣. 固相萃取-大体积进样-气相色谱法定量分析油茶籽油中的矿物油[J]. 分析化学, 2016, 44(9): 1419-1424. doi: 10.11895/j.issn.0253-3820.160138 shu
Citation:  LIU Ling-Ling,  WU Yan-Wen,  LI Bing-Ning,  WANG Yu,  YANG Yi-Fan,  ZU Wen-Chuan,  WANG Xin-Xin. An Off-line Solid Phase Extraction Combined with Large Volume Injection-Gas Chromatography-Flame Ionization Detection Method for Determination of Mineral Oil Saturated Hydrocarbons in Camellia Seed Oils[J]. Chinese Journal of Analytical Chemistry, 2016, 44(9): 1419-1424. doi: 10.11895/j.issn.0253-3820.160138 shu

固相萃取-大体积进样-气相色谱法定量分析油茶籽油中的矿物油

  • 基金项目:

    本文系得到北京市科技计划课题(No.Z161100000616005)和北京市科学技术研究院财政专项(No.PXM2016_178305_000010)的资助。

摘要: 建立了一种固相萃取(SPE)离线净化,气相色谱(配备大体积进样系统(LVI))定量分析油茶籽油中矿物油污染物(MOSH)的方法。SPE柱采用AgNO3渍活化硅胶为填料,同时比较了添加活化氧化铝前后的效果,确定SPE柱填料为10 g银渍活化硅胶-10 g活化氧化铝;LVI的程序升温(PTV)参数优化为初始温度75℃保持1 min (分流比200:1),以250℃/min升温至370℃(关闭分流阀1 min);切换分流比为50:1;进样量40 μL。结果表明:MOSH标准液体石蜡在5-500 mg/L范围呈良好线性关系,相关系数为0.998,方法的检出限和定量限分别为0.26 mg/kg和0.80 mg/kg,加标回收率93.3%~112.7%,相对标准偏差(RSD)为1.8%~5.2%,日间和日内重复性(RSD)均小于2.6%。本方法用于市售11个油茶籽油中MOSH含量测定,其结果为6.8~76.7 mg/L。本方法操作简便、检出限低、重现性好且成本低廉,适用于食用油中MOSH的定量分析。

English

  • 食品中的矿物油问题由来已久,主要涉及抛光大米和食用油掺假。2008年,欧盟发生了近10万吨进口乌克兰葵花籽油被矿物油污染事件[1],使得食用油中矿物油的分析备受关注。油茶籽油是我国特有的高级食用油,其脂肪酸组成与橄榄油相似,具有很高保健功能,有“东方橄榄油”之称[2]。随着人们健康理念的提高,近年来油茶籽油的需求量不断上升。因此,做好油茶籽油的质量监测具有现实意义。

    矿物油是石油原油经过物理分离、化学转化等过程形成的C10~C50的烃类化合物,主要由烷烃(MOSH)以及烷基取代的芳香烃(MOAH)两大类组成[1]。由于MOSH的含量远远高于MOAH,且易于分析,因此,一般将MOSH作为矿物油污染的标志物[3]。然而,矿物油化学组成复杂,其定量分析通常采用气相色谱-氢火焰离子化检测(GC-FID)。原因是FID系唯一对所有矿物油组分响应完全一致的检测器,GC是与FID检测器联用的理想分离方式[4]。 MOSH的GC谱图是一个类似“驼峰”的宽峰,宽峰上方的尖峰为食用油中天然正构烷烃,定量计算时需要扣除,即MOSH的含量通过计算GC谱图的基线与宽峰之间的“空白”面积得到[4~7]

    然而,FID方法检测矿物油有两个缺点,即灵敏度低与选择性差。灵敏度低则要求进入检测器的目标物浓度足够高,选择性差则需要进入FID的目标物足够纯。一般经验要求进入FID的MOSH质量要达到50~100 ng[4];并尽可能除去食用油中固有的角鲨烯和天然烷烃。换言之,FID分析矿物油要求富集与净化的程度非常高。目前,高效液相色谱(HPLC)与GC的联用是最常用的矿物油分析技术,它通过HPLC与GC接口实现在线净化、富集,有效提高了矿物油的浓度和纯度[8~10]。然而,HPLC-GC仪器昂贵,无法普及。因此,离线净化色谱柱或固相萃取柱(SPE)配合大体积进样系统(LVI)的GC就成为另外一种解决途径[11, 12]

    SPE方法快速、简便、高效、经济,利用SPE柱净化的关键是填料。硅胶能够有效的吸附食用油中的甘油三酯[5],是矿物油净化的首选填料。硅胶经过活化可以显著提高吸附容量[11];银渍硅胶能够吸附食用油中角鲨烯等物质[13];氧化铝则对碳数高于C23的天然烷烃有吸附作用[14, 15]。因此,本研究拟通过优化SPE柱填料与LVI-GC条件,建立油茶籽油中MOSH的定量分析方法,并在此基础上考察我国油茶籽油中的矿物油污染情况。

    GC-2010 plus气相色谱仪,配备PTV进样口和FID(日本Shimadzu公司);DB-5HT石英毛细管柱(15 m × 0.25 mm × 0.1 μm,美国Agilent公司);N-EVAP氮气吹干仪(美国Organomation公司)。

    正己烷、丙酮(色谱纯,美国Fisher Scientific公司);硅胶(0.063~0.200 mm,德国Merck公司)和中性氧化铝(100~200目,国药集团化学试剂有限公司),使用前均在高温炉中于600℃烘烤6 h,冷却,置于干燥器备用;液体石蜡(Paraffin oil)、正十八烷烃(n-Octadecane,C18)、C7~C40正构烷烃混合标准溶液、胆甾醇(5-Alpha cholestane,Cho),均购自美国Sigma-Aldrich公司;AgNO3(分析纯,北京化工厂),配制成0.75 g/mL溶液。11个油茶籽油样品均购于当地超市。实验用所有玻璃器皿需依次用铬酸洗液、超纯水、丙酮和正己烷溶液冲洗后烘干。

    配制2 mg/mL的C18(内标)和Cho(MOSH的定位标准)储备液,然后分别取1 mL置于50 mL容量瓶中,以正己烷定容,得40 mg/L混合标准溶液。配制50 g/L液体石蜡储备液,然后分别取5,10,25,50,100,200和500 μL于50 mL容量瓶中,以正己烷定容得到浓度为5,10,25,50,100,200和500 mg/L系列标准工作溶液

    准确称取1.000g油茶籽油试样于2 mL容量瓶中,加入40 mg/L混合标准溶液200 μL,以正己烷定容。净化前SPE柱先用20 mL正己烷淋洗,弃去流出液,待正己烷近干时,加入上述试液2 mL,分次加入50 mL正己烷洗脱。弃去10 mL死体积,收集后续40 mL洗脱液;氮吹浓缩近干,用正己烷定容至0.5 mL,备用。

    取50 mL玻璃注射器(14 cm×2.8 cm),底部放入圆形滤纸,依次装填10 g氧化铝,2 g无水硫酸钠和10 g银渍硅胶,中间用单层滤纸隔开,轻轻敲实,上面盖一层滤纸,用于净化食用油。

    称取45 g活化硅胶至500 mL圆底烧瓶(事先用铝箔纸包裹)中,再加入0.75 g/mL AgNO3溶液6 mL,均质30 min,静置12 h后备用。

    PTV参数:初始温度75℃保持1 min(分流比200:1),以250℃/min 升温至370℃(关闭分流阀1 min);切换分流比为50:1;进样量40 μL。GC分析条件:起始温度65℃,保持10 min,然后以25℃/min升温至350℃,再以5℃/min升温至370℃,保持10 min; 柱内采用恒压模式,载气为高纯氮气; 氢气流量30 mL/min; 空气流量400 mL/min;FID温度380℃。

    液体石蜡是石油精炼后得到的烷烃混合物,是目前比较适于矿物油定量分析的标准品[4]。在2.3.4 节条件下分析2.2节配制的液体石蜡系列工作溶液。以GC谱图中的宽峰面积与相应浓度绘制曲线,所得标准曲线为y=34863x-20512,相关系数0.998,液体石蜡在5~500 mg/L浓度范围内线性关系良好。将5 mg/L液体石蜡工作溶液在相同条件下进样11次,以3倍和10倍的标准偏差计算得到方法的检出限(LOD)和定量限(LOQ)分别为0.26和0.80 mg/kg。

    选取10#油茶籽油作为样品基质,分别添加液体石蜡标准溶液进行回收率实验,添加水平为25.0,50.0和100.0 mg/kg。以10 g银渍硅胶-10 g活化氧化铝的SPE柱净化,每个试样及空白分别平行测定6次,计算平均加标回收率和相对标准偏差(RSD)。由表 1可知,加标回收率在93.3%~112.7%之间,RSD在1.8%~5.2%之间,本方法的回收率和RSD值均符合检测要求。

    表 1

    表 1  液体石蜡的加标回收率和相对标准偏差(n=6)
    Table 1.  Recoveries and RSD of paraffin oil(n=6)
    下载: 导出CSV
    分析物Analytes添加浓度Spiked conc.(mg/kg)样品含量Content in sample(mg/kg) 检出量Total found(mg/kg)回收率Recovery(%)相对标准偏差RSD(%)
    25.060.197.24.9
    液体石蜡Paraffin oil50.035.892.2112.75.2
    100.0129.193.31.8

    选取10#油茶籽油样品,按照上述建立的方法每天测定6次,计算日内重复性;连续测定5天,计算日间重复性。日内和日间标准偏差分别为2.6%和1.6%。矿物油定量方法的重复性除了与样品前处理与仪器分析相关之外,还与矿物油宽峰面积的积分方法密切相关,不同的积分方法(包括消除尖峰的方法)对于分析结果的影响很大,通常认为,积分结果相差15%是可以接受的[4]

    采用上述方法,即通过装填10 g银渍硅胶-10 g活化氧化铝净化的SPE柱净化1 g植物油样品,净化试液经浓缩后注入LVI-GC-FID分析,检测了11个市售的不同厂家与品牌油茶籽油中MOSH的含量。由表 2可见,油茶籽油的MOSH含量为6.8~76.7 mg/kg。其中8#和9#样品MOSH含量较低,低于10 mg/kg; 2#,3#,6#,10#和11#等5个样品中的MOSH含量为27.0~38.7 mg/kg;其余4个样品(1#,4#,5#和7#)的MOSH含量较高,均高于50 mg/kg。50 mg/kg 是2008年欧盟对乌克兰葵花籽油中MOSH提出的限量规定[17]。如果参照此限量,我国市售油茶籽油中的矿物油污染情况不容忽视。

    表 2

    表 2  市售油茶籽油中MOSH的检测结果
    Table 2.  Analytical results of MOSH in commercial camellia seed oils
    下载: 导出CSV
    样品SampleMOSH(mg/kg)
    1#61.1±1.2
    2#33.3±1.0
    3#27.0±0.3
    4#62.7±2.8
    5#61.2±2.8
    6#38.7±2.3
    7#76.7±5.2
    8#6.8±1.0
    9#9.0±2.1
    10#35.8±0.6
    11#35.9±0.5
    Mean value37.4

    食用油的污染来源非常广泛,包括环境污染与包装材料迁移油迁移,包装材料迁移相对简单,环境污染则涉及油籽生长、收割、晾晒、加工(油脂提取和精炼)、油脂贮存以及运输等环节中接触到的杀虫剂、发动机润滑油、未完全燃烧的汽油、轮胎和沥青的碎屑以及不洁净空气等。不同来源的污染通常表现在矿物油的组成上,本实验仅对我国市售油茶籽油中的MOSH总量进行了测定。对于矿物油的污染来源,需要后续进一步分析MOSH的组成情况。

    硅胶吸附弱极性的甘油三酯,而不吸附非极性的矿物油,因而利用硅胶可以除去食用油中的甘油三酯。此外,银渍硅胶对双键有微弱作用,可以吸附植物油中角鲨烯、胆甾烯(甾醇的衍生物)及胡萝卜素等物质,因此,当植物油通过装填银渍硅胶的SPE柱时,油脂中的甘油三酯和角鲨烯等干扰物质被吸附,矿物油直接流出,从而达到净化目的。Fiselier等[13]研究发现,3 g银渍硅胶可以保留400 mg油脂。本实验采用10 g银渍硅胶净化1 g油茶籽油,洗脱液浓缩后注入GC-FID分析。采用上述方法测得一个市售油茶籽样品(4#)中矿物油的含量为71.3 mg/kg(图 1)。

    图 1

    图 1  油茶籽油中MOSH的GC-FID谱图(1.0 g油茶籽油通过10 g银渍硅胶SPE柱净化的结果)
    Figure 1.  Gas chromatography-flame ionization detector (GC-FID) chromatogram of mineral oil saturated hydrocarbon (MOSH) in a camellia seed oil(1.0 g of camellia seed oil purified by SPE with 10 g of Ag-silica gel)

    通常,植物油中含有大量天然烷烃,它们是以奇数碳C23~C35为主的正构烷烃[4]图 1的MOSH宽峰上方的尖峰即为天然烷烃。由于这些尖峰影响MOSH的面积计算,需要通过SPE净化除去。

    Fiselier等认为经过350~400℃活化的氧化铝能够选择性吸附C20以上的正构烷烃[14]。为此,实验采用10 g银渍硅胶-10 g活化氧化铝净化1 g油茶籽油。结果表明,油茶籽油经过硅胶-氧化铝净化后,C23~C31正构烷烃被部分吸附,C31以上的长碳链烷烃几乎完全除去(图 2)。同时,氧化铝对目标物矿物油也有少量吸附。采用10 g银渍硅胶-10 g活化氧化铝净化上述样品(4#)得到的矿物油含量为62.7 mg/kg,相比之下,矿物油损失了13.7%。矿物油是组成复杂,其测定方法具有特殊性,一般认为损失低于15%即可满足矿物油的分析要求[4]。因此,氧化铝由于消除了天然烷烃的干扰作用,可以用于植物油的净化。

    图 2

    图 2  油茶籽油中MOSH的GC-FID谱图(1.0 g油茶籽油样品通过10 g银渍硅胶-10 g活化氧化铝SPE柱净化)
    Figure 2.  GC-FID chromatogram of MOSH in a camellia seed oil(1.0 g of camellia seed oil purified by SPE with 10 g Ag-silica gel-10 g of activated aluminum oxide)

    由于SPE柱填料的用量与上样量、洗脱溶剂等密切相关,增加填料用量势必会增加试剂消耗和浓缩时间,从而增加了前处理工作量和污染风险[16]。同时氧化铝对矿物油也有吸附,加大填料用量也会增加目标物的损失,因此,优化氧化铝用量就是要在消除干扰和准确分析之间找到一个平衡点。

    不同植物中的天然烷烃含量不尽相同,意味着氧化铝的用量可能不一样。本实验以烷烃含量较高的油茶籽油为例,以期为其他食用油的净化提供参考。为了考察氧化铝对烷烃的吸附容量,分别将20 μg C7~C40正构烷烃的混合标准溶液与50 μg液体石蜡混合,用正己烷定容至2 mL,制备得到考察氧化铝吸附容量的试液。然后分别用填有不同质量(0,5,10和20 g)的氧化铝SPE柱净化,以此考察氧化铝对烷烃的吸附能力以及液体石蜡回收率的影响,实验结果见图 3图 4

    图 3

    图 3  采用不同用量的活化氧化铝装填SPE柱净化烷烃的GC-FID谱图 (图中1~31代表n-C10~n-C40)
    Figure 3.  GC-FID chromatograms of n-alkanes purified by SPE with (0,5,10,20 g) activated aluminum oxide (No. 1~31: n-C10~n-C40)

    图 4

    图 4  活化氧化铝对长链正构烷烃的吸附能力考察
    Figure 4.  Adsorption capacity of activated aluminum oxide for long chain n-alkanes

    结果表明,氧化铝的用量与其吸附烷烃的能力呈正相关,即用量越大,吸附容量越高。以C28为例,当氧化铝用量分别为5,10,20 g时,吸附的C28分别达到42%,88%,99%。然而,氧化铝对不同碳数烷烃的吸附能力不同,碳链越长,吸附作用越强。由图 34可知:氧化铝对C21以下的烷烃基本没有吸附;随着烷烃碳数的增加,氧化铝的吸附逐渐增强。10 g氧化铝对C22~C31的吸附量分别为2%,19%,43%,57%,72%,81%,88%,94%,97%和99%,对C32~C40基本完全吸附;当氧化铝用量达到20 g时,能够将10 g氧化铝没有完全吸附的C28~C31全部吸附。然而,提高氧化铝用量也会相应增加其对矿物油的吸附。5,10和20 g氧化铝吸附的液体石蜡分别为8%,23%和33%。此结果与文献[14, 15]的氧化铝吸附容量结果完全一致。

    综上,由于氧化铝的吸附能力较弱,5 g氧化铝无法实现吸附大部分正构烷烃;10 g氧化铝则能够吸附绝大部分的碳数大于C28的正构烷烃;20 g氧化铝虽然能够除去C28以上的所有烷烃,但液体石蜡的损失也由23%升至33%。由于实际应用中可以容忍少量矿物油损失(15%以内)与部分烷烃的干扰,因此本实验选用10 g银渍硅胶-10 g活化氧化铝作为SPE柱填料,用于净化油茶籽油中的矿物油。

    建立了一种离线SPE结合LVI-GC-FID法测定油茶籽油中MOSH的方法,优化了SPE柱填料、净化条件与LVI-GC-FID分析条件。SPE柱的填料确定了以10 g银渍硅胶-10 g活化氧化铝,结果显示:油茶籽油经过硅胶-氧化铝净化,有效除去了甘油三酯、角鲨烯以及正构烷烃等干扰物,净化后的试样经浓缩注入LVI-GC-FID分析,其结果满足准确度和重复性等方法学考察要求。与在线联用的HPLC-GC-FID相比,离线SPE结合LVI-GC-FID的方法操作简单、成本低,适用于普通实验室对食用油中矿物油的检测。此外,分析了我国11个市售油茶籽油中矿物油的含量,结果为6.8~76.7 mg/kg,其中有4个样品的含量超过欧盟对食用油的限量规定了50 mg/kg。因此,做好食用油中矿物油的分析检测,对于保障我国食品安全具有现实意义。

    1. [1]

      European Food Safety Authority (EFSA) (2012) Scientific Opinion on Mineral Oil Hydrocarbons in Food. EFSA J 10(6): 2704

    2. [2]

      BO Yun-Ai, SONG Da-Hai, ZHANG Fu-Qiang, XIAO Xue-Jun, WANG Qun-Xue. Chin. Oil Fat, 2008, 33(3): 39-41柏云爱, 宋大海, 张富强, 肖学军, 王群学. 中国油脂, 2008, 33(3): 39-41

    3. [3]

      Tranchida P Q, Zoccali M, Purcaro G, Moret S, Conte L, Beccaria M, Dugo P, Mondello L. J. Chromatogr. A, 2011, 1218: 7476-7480

    4. [4]

      Biedermann M, Grob K. J. Chromatogr. A, 2012, 1255: 56-75

    5. [5]

      Fiorini D, Paciaroni A, Gigli F, Ballini R. Food Control, 2010, 21: 1155-1160

    6. [6]

      WU Yan-Wen, WANG Ying, LI Bing-Ning, WANG Xin-Xin, WANG Yu, ZU Wen-Chuan. J. Food Saf. Qual., 2015, 6(6): 2145~2150武彦文, 王颖, 李冰宁, 王欣欣, 汪雨, 祖文川. 食品安全质量检测学报, 2015, 6(6): 2145~2150

    7. [7]

      Animal and vegetable fats and oils-Determination of aliphatic hydrocarbons in vegetable oils. Draft International Standard. ISO/DIS 17780: 2014(E)

    8. [8]

      Moret S, Barp L, Grob K, Conte L S. J. Chromatogr. A, 1996, 750: 361-368

    9. [9]

      Barp L, Purcaro G, Moret S, Conte L S. J. Sep.Sci., 2013, 36: 3135-3139

    10. [10]

      Purcaro G, Zoccali M, Tranchida P Q, Barp L, Moret S, Conte LS. Dugo P, Mondello L. Anal. Bioanal. Chem., 2013, 405: 1077-1084

    11. [11]

      Moret S, Grob K, Conte L S. Food Chem., 2011, 129: 1898-1903

    12. [12]

      Moret S, Barp L, Purcaro G, Conte L S. J. Chromatogr. A, 2012, 1243: 1-5

    13. [13]

      Fiselier K, Grundböcka F, Schönb K, Kappenstein O, Pfaff K. J. Chromatogr. A, 2013, 1271(1): 192-200

    14. [14]

      Fiselier K, Fiorini D, Grob K. Anal. Chim. Acta, 2009, 634: 96-101

    15. [15]

      Fiselier K, Fiorini D, Grob K. Anal. Chim. Acta, 2009, 634: 102-109

    16. [16]

      CHEN Xiao-Hua, WANG Qun-Jie. Technology and Application of Solid Phase Extraction. Beijing: Science Press, 2010: 109陈小华, 汪群杰. 固相萃取技术与应用. 北京: 科学出版社, 2010: 109

    17. [17]

      Summary Minutes of the Meeting of the Standing Committee on the Food Chain and Animal Health. Brussels, 20 June 2008

  • Figure 1  Gas chromatography-flame ionization detector (GC-FID) chromatogram of mineral oil saturated hydrocarbon (MOSH) in a camellia seed oil(1.0 g of camellia seed oil purified by SPE with 10 g of Ag-silica gel)

    Figure 2  GC-FID chromatogram of MOSH in a camellia seed oil(1.0 g of camellia seed oil purified by SPE with 10 g Ag-silica gel-10 g of activated aluminum oxide)

    Figure 3  GC-FID chromatograms of n-alkanes purified by SPE with (0,5,10,20 g) activated aluminum oxide (No. 1~31: n-C10~n-C40)

    Figure 4  Adsorption capacity of activated aluminum oxide for long chain n-alkanes

    Table 1.  Recoveries and RSD of paraffin oil(n=6)

    分析物Analytes添加浓度Spiked conc.(mg/kg)样品含量Content in sample(mg/kg) 检出量Total found(mg/kg)回收率Recovery(%)相对标准偏差RSD(%)
    25.060.197.24.9
    液体石蜡Paraffin oil50.035.892.2112.75.2
    100.0129.193.31.8
    下载: 导出CSV

    Table 2.  Analytical results of MOSH in commercial camellia seed oils

    样品SampleMOSH(mg/kg)
    1#61.1±1.2
    2#33.3±1.0
    3#27.0±0.3
    4#62.7±2.8
    5#61.2±2.8
    6#38.7±2.3
    7#76.7±5.2
    8#6.8±1.0
    9#9.0±2.1
    10#35.8±0.6
    11#35.9±0.5
    Mean value37.4
    下载: 导出CSV
  • 加载中
计量
  • PDF下载量:  2
  • 文章访问数:  1159
  • HTML全文浏览量:  227
文章相关
  • 收稿日期:  2016-02-29
  • 修回日期:  2016-05-31
通讯作者: 陈斌, bchen63@163.com
  • 1. 

    沈阳化工大学材料科学与工程学院 沈阳 110142

  1. 本站搜索
  2. 百度学术搜索
  3. 万方数据库搜索
  4. CNKI搜索

/

返回文章