Citation: Zhi-Feng CAI, Liang-Liang WU, Kai-Fei QI, Chen-Hua DENG, Shen ZHANG, Cai-Feng ZHANG. Synthesis of Proline-Stabilized Cu Nanoclusters for Detection of Picric Acid[J]. Chinese Journal of Applied Chemistry, 2021, 38(1): 107-115. doi: 10.19894/j.issn.1000-0518.200187
脯氨酸保护的铜纳米团簇的制备及其在三硝基苯酚检测中的应用
English
Synthesis of Proline-Stabilized Cu Nanoclusters for Detection of Picric Acid
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Key words:
- Copper nanoclusters
- / Proline
- / Fluorescence quenching
- / Picric acid
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2, 4, 6-三硝基苯酚(PA),俗称为苦味酸,是一种通用试剂,已广泛应用于炸药、烟花爆竹和火箭燃料以及皮革、制药和染料工业等领域。最近,PA对国土安全和人类安全的威胁引起了越来越多的关注,同时对人体的中枢神经系统、心血管系统、新陈代谢、肝脏、肾脏和泌尿系统具有一定的危害[1-3]。对于PA含量的准确检测显得至关重要。目前,已经开发了多种检测PA的方法,包括比色法[4]、电化学[5]、荧光法[6]、质谱法[3]、离子迁移谱法[7]、表面等离子体共振法[8]和表面增强拉曼散射法[9],但是这些方法通常需要复杂的合成过程才能获得探针,需要昂贵的仪器或灵敏度较低。因此,研究灵敏度高和低成本的荧光探针非常重要。
由于荧光金属纳米团簇具有生物相容性,同时在有毒物质的检测和生物成像等领域具有很好的应用前景[10-12]。与金、银等贵金属[13-14]纳米团簇相似,铜纳米团簇(Cu NCs)同样具有良好的水溶性、显著的催化性能和优异的光学性质。但是,Cu NCs具有许多优势,包括实用性、原料易得和出色的光稳定性等。目前,Cu NCs的合成方法主要有蚀刻法、电化学法、光还原法、声化学法、微波辅助法和模板辅助法[15-19],保护剂主要有DNA、高分子聚合物、硫醇、蛋白质和其它一些小分子[20-23]。在过去的10年中,Cu NCs受到了越来越多的关注,已被广泛用于检测各种有毒有害物质[24-26]。
本文以脯氨酸(Pro)为保护剂,盐酸羟胺(NH2OH ·HCl)为还原剂,通过一步化学还原法制备脯氨酸稳定的Cu NCs。采用分子荧光仪和紫外可见吸收仪对Cu NCs的光学性质进行分析,通过透射电子显微镜(TEM)、X射线光电子能谱(XPS)和傅里叶变换红外波谱仪(FTIR)对Cu NCs的结构进行表征。同时对Cu NCs检测PA的检测限和荧光猝灭机理等进行了探讨。此外,研究了该探针在检测实际水样中PA含量的可行性。
1. 实验部分
1.1 仪器和试剂
F-7000型荧光光谱仪(日本日立公司);8453型紫外可见分光光度计(UV-Vis,美国安捷伦公司);FTIR-8400S型傅里叶变换红外光谱仪(FTIR, 日本岛津公司);FEI Tecnai G2 F20型透射电子显微镜(TEM,美国FEI公司);ESCALAB 250XI型X射线光电子能谱仪(XPS,美国ThermoFisher Scientific公司);FE20型pH计(上海梅特勒仪器公司)。
L-脯氨酸(Pro)、氯化铜、盐酸羟胺(NH2OH ·HCl)、磷酸二氢钠及磷酸氢二钠均为分析纯试剂,购于天津市富宇有限公司;NaCl、KCl、MnCl2、CdCl2、MgCl2·6H2O、FeCl3、AgNO3、CuCl2·2H2O、CoCl2·6H2O、HgCl2、三硝基苯酚(PA)、对硝基苯酚(p-NP)、对硝基甲苯(p-NT)、硝基苯(NB)、苯甲酸(BA)、苯酚(CA)、甲苯(MB)及邻苯二酚(o-DHB)均为分析纯试剂,购于上海阿拉丁化学公司;溶液均用美国Mili-Q纯水仪制备的超纯水配制。
1.2 铜纳米团簇的制备
所有玻璃器皿先用王水(V(HCl)∶V(HNO3)=3∶1)洗涤,再分别采用乙醇和超纯水多次冲洗。首先,在室温下将Pro水溶液(2 mL,6 mol/L)与CuCl2水溶液(6 mL,4 mmol/L)混合,搅拌培育2 min,使Pro和Cu2+发生配合;然后,将NH2OH ·HCl水溶液(2 mL,6 mmol/L)逐滴加入上述混合物中,并将该混合物置于80 ℃下反应23 h,溶液的颜色逐渐从蓝色变为棕色,表明Cu NCs的生成;最后,在超纯水中使用透析袋(MWCO 3000)透析24 h除去未反应的Cu2+和Pro。将产物储存在冰箱(4 ℃)中备用。
1.3 三硝基苯酚的检测
在PA的检测中,将相应浓度的PA溶液滴入1 mL Cu NCs溶液和1 mL PBS缓冲溶液(磷酸盐缓冲溶液,pH=7.5)中(PA的最终浓度为0、0.5、0.7、1、2、5、7、10、15、20、25、30、40、50、60和70 μmol/L)。将混合溶液在室温下孵育3 min。同时,在397 nm的激发波长下测量Cu NCs的荧光强度(激发和发射的狭缝宽度设置为20 nm)。相对荧光强度(F0/F)与PA浓度之间的关系用于研究线性关系,其中F0和F分别代表不存在和存在PA的情况下Cu NCs的荧光强度。为了研究Cu NCs的选择性,在相同条件下探索了金属离子(Na+, K+, Mn2+, Cd2+, Mg2+, Fe3+, Ag+, Cu2+, Co2+, Hg2+)和其它结构相似的物质(p-NP、p-NT、NB、BA、CA、MB及o-DHB)对Cu NCs荧光强度的影响。
1.4 实际水样中三硝基苯酚的检测
实际水样取自生活污水,将其离心(10000 r/min)并通过0.22 μm滤膜以除去任何悬浮颗粒,随后加入不同标准浓度的PA溶液。接下来,将含有PA的实际水样加至Cu NCs溶液培育3 min,记录各个浓度下的Cu NCs荧光强度。
2. 结果与讨论
2.1 Cu NCs的表征
为了证明Cu NCs的成功合成,分别采用FTIR、TEM、XPS、荧光光谱和紫外可见光谱进行表征。由图 1A可见,Cu NCs的最大激发和发射波长分别为397和458 nm,Cu NCs溶液在可见光和紫外光(365 nm)照射下呈棕色和蓝色。此外,考察了激发波长对发射波长的影响,如图 1B所示,Cu NCs的发射波长随着激发波长的变化而变化(340~410 nm),主要原因是材料存在不均一的颗粒粒径。同时分别研究了Cu NCs、Pro和NH2OH·HCl的荧光光谱和紫外可见吸收光谱。由图 2A可见,在458 nm附近出现了明显的峰,而Pro和NH2OH·HCl没有出现。由图 2B所示,Cu NCs在325 nm处出现一个弱吸收峰,在500~600 nm处未出现颗粒较大的铜纳米粒子的吸收峰,表明Cu NCs中没有出现大颗粒的铜纳米粒子[10, 12],而Pro和NH2OH·HCl的紫外吸收谱图中未出现任何吸收峰。
图 1
图 2
为了进一步阐明Cu NCs的纳米结构,采用TEM直接观察其形态和粒径分布。由图 3A可见,Cu NCs的形貌为球状,且分散性好,平均直径为(1.89±0.13) nm。同时,通过使用硫酸奎宁作为标准,制备的Cu NCs的荧光量子产率为3.2%。采用FTIR对Cu NCs和Pro进行表征,如图 3B所示。3700~3100 cm-1归属于O—H和N—H键的吸收峰,3063 cm-1处归属于C—H键的伸缩振动峰,1624.2 cm-1处归属于N—H键的弯曲振动,1000~650 cm-1处归属于C—H键的弯曲振动,可见Cu NCs和Pro的表面具有相似的官能团,表明Pro在Cu NCs的表面成功改性。通过XPS研究了Cu NCs的组分,如图 3C和3D所示。Cu NCs的XPS全谱中出现了C(1s)、N(1s)、O(1s)、O(KLL)和Cu(2p)的5个主要峰,表明Cu NCs主要由C、N、O和Cu组成。Cu的XPS谱图中,在932.2和952.7 eV处观察到两个峰,分别对应于Cu(0)的2p3/2和2p1/2电子的结合能,而在~942 eV附近并没有出现峰,表明Cu(Ⅱ)被完全还原。Cu(0)的典型2p3/2峰与Cu(Ⅰ)的峰的结合能仅相差约0.1 eV。因此,Cu NCs的中Cu的化合价态很可能在0和+1之间。综上所述,Cu NCs被成功地合成。
图 3
2.2 Cu NCs的稳定性
良好的水溶性和较强的荧光强度对Cu NCs在实际应用中是非常重要的。因此,研究了储存时间、光照时间和氯化钠浓度对Cu NCs荧光强度的影响,如图 4所示。随着储存时间的延长,Cu NCs的荧光强度几乎不变(图 4A);还研究了Cu NCs的光稳定性,在365 nm的紫外灯照射60 min后,Cu NCs的荧光强度保持稳定(图 4B);即使在500 mmol/L NaCl溶液中,Cu NCs的荧光强度也只是略有变化(图 4C)。表明该Cu NCs具有良好的稳定性。
图 4
2.3 Cu NCs检测PA条件的优化
考察了pH值和培育时间对PA检测的影响,如图 5所示。由图 5A可见,随着pH值不断提高,Cu NCs的荧光猝灭程度先增大后降低,当pH=7.5时,猝灭程度达到最大。由图 5B可见,当加入70 μmol/L的PA到Cu NCs溶液中时,反应3 min后荧光猝灭达到稳定。因此,检测PA时选择pH=7.5和培育时间为3 min。
图 5
2.4 PA的荧光检测
图 6A为加入不同浓度的PA后Cu NCs溶液的荧光发射谱图(0、0.5、0.7、1、2、5、7、10、15、20、25、30、40、50、60和70 μmol/L),可见,随着PA浓度的增大,Cu NCs的荧光强度逐渐降低。基于458 nm处的荧光强度变化,研究了相对荧光强度(F0/F)与PA浓度之间的关系(图 6B)。由图 6C和6D可见,当PA的浓度分别介于0.5~15 μmol/L和20~70 μmol/L之间时,相对荧光强度(F0/F)与PA浓度呈现良好的线性关系,线性方程分别为F0/F=0.013[PA]+1.004和F0/F=0.032[PA]+0.660,线性相关系数分别为0.9842和0.9954,检测限(LOD)为0.092 μmol/L(S/N=3)。线性范围和检出限均优于其它荧光探针,见表 1。
图 6
表 1
2.5 检测机理
为了更好地了解Cu NCs对PA的荧光猝灭机理,分别测定了Cu NCs和Cu NCs-PA系统的荧光寿命,如图 7A所示。由图 7A可见,Cu NCs和Cu NCs-PA系统的荧光寿命分别为7.53和7.15 ns,加入PA后荧光寿命没有明显变化,表明猝灭机理为静态猝灭[26]。此外,通过研究PA的紫外可见吸收谱图与Cu NCs的激发和发射谱图之间的关系,如图 7B所示。由图 7B可见,PA的紫外可见吸收谱图与Cu NCs的激发和发射谱图存在重叠现象,表明该猝灭机理存在内滤效应[26]。
图 7
2.6 选择性
为了研究Cu NCs检测PA的选择性,研究了金属离子(Na+, K+, Mn2+, Cd2+, Mg2+, Fe3+, Ag+, Cu2+, Co2+, Hg2+)和其它结构相似的物质(p-NP、p-NT、NB、BA、CA、MB及o-DHB)(浓度为70 μmol/L)对Cu NCs荧光强度的影响,如图 8所示。由图 8可见,当加入PA后,Cu NCs的荧光强度明显降低,而在相同条件下加入其它物质后,荧光强度的变化可以忽略。因此,Cu NCs作为荧光探针可以选择性地检测PA。
图 8
2.7 实际水样中PA的检测
为了验证该荧光探针的实用性,检测了真实水样中的PA含量。用于测试的水样来自生活中的污水。分别检测了水样中的PA含量,并进行了回收率实验,结果见表 2中。水样品中检出的PA回收率在93.5%~110.4%范围内。表明所制备的探针适用于真实水样中的PA测定。
表 2
样品
Samples添加浓度
Added/(μmol·L-1)检测浓度
Found/(μmol·L-1)回收率
Recovery/%Water 1 0 aND bNC 5 5.32 106.4 15 15.45 103.0 25 23.52 94.1 Water 2 0 aND bNC 5 5.52 110.4 15 14.02 93.5 25 25.26 101.0 a.未检出; b.未计算。
a.ND, not detectable; b.NC, not calculated.3. 结论
本文以脯氨酸(Pro)为保护剂,NH2OH·HCl为还原剂,通过一步化学还原法制备Pro稳定的铜纳米团簇(Cu NCs)。该Cu NCs具有优异的稳定性。同时Cu NCs具有很好的分散性,尺寸大小为(1.89±0.13) nm。最大激发和发射波长分别为397和458 nm。作为检测三硝基苯酚(PA)的荧光探针,具有很高的灵敏度和选择性,线性范围为0.5~15 μmol/L和20~70 μmol/L,检测限为0.092 μmol/L,且已成功地用于检测实际水样中的PA。
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图 6 (A) 不同PA浓度所对应Cu NCs的荧光光谱;(B)相对荧光强度与PA浓度(0~70 μmol/L)的关系;(C)相对荧光强度与PA浓度(0.5~15 μmol/L)的线性关系; (D)相对荧光强度与PA浓度(20~70 μmol/L)的线性关系
Figure 6 (A) Emission spectra of Cu NCs in the presence of the increasing concentration (0, 0.5, 0.7, 1, 2, 5, 7, 10, 15, 20, 25, 30, 40, 50, 60 and 70 μmol/L) of PA at 397 nm excitation. (B) Plot of the F0/F vs PA concentration. (C) The calibration plot of F0/F vs PA concentration range from 0.5 to 15 μmol/L. (D) The calibration plot of F0/F vs PA concentration range from 20 to 70 μmol/L. (F0 and F represented the FL response of Cu NCs in the absence and presence of PA, respectively)
图 7 (A) Cu NCs加入PA前后的荧光寿命(a.Cu NCs; b.Cu NCs+PA); (B) Cu NCs的激发谱图(a)、发射谱图(b)和PA的紫外可见吸收谱图(c)
Figure 7 (A) The fluorescence lifetimes of the pro-Cu NCs without and with PA (a.Cu NCs; b.Cu NCs+PA); (B) The fluorescence excitation (a) and emission spectra (b) of Cu NCs and UV-Vis absorption spectra of PA (c)
图 8 铜纳米团簇的相对荧光强度(检测物的浓度为70 μmol/L)
Figure 8 The relative emission intensity of the Cu NCs in the presence of Na+, K+, Mn2+, Cd2+, Mg2+, Fe3+, Ag+, Cu2+, Co2+, Hg2+, PA, BA, p-NP, p-NT, CA, MB, NB and o-DHB (F0/F, where F0 and F were the fluorescence intensities of Cu NCs in the absence and presence of interferences)
表 1 不同探针对PA的检测
Table 1. Comparison of fluorescence sensors for the determination of PA
表 2 水样中PA的测定
Table 2. Recovery examination of PA spiked in real water samples
样品
Samples添加浓度
Added/(μmol·L-1)检测浓度
Found/(μmol·L-1)回收率
Recovery/%Water 1 0 aND bNC 5 5.32 106.4 15 15.45 103.0 25 23.52 94.1 Water 2 0 aND bNC 5 5.52 110.4 15 14.02 93.5 25 25.26 101.0 a.未检出; b.未计算。
a.ND, not detectable; b.NC, not calculated.
计量
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